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Revista chilena de infectología

versão impressa ISSN 0716-1018

Rev. chil. infectol. v.27 n.3 Santiago jun. 2010

http://dx.doi.org/10.4067/S0716-10182010000300012 

Rev Chil Infect 2010; 27(3): 238

REVISTA DE REVISTAS

 

Cultivo versus reacción de polimerasa en cadena para vigilar enterococo resistente a vancomicina.

 

Comparison of PCR and culture for screening of vancomycin-resistant Enterococci: highly disparate results for vanA and vanB.
Mak A, Miller MA, Chong G, Monczak Y. J Clin Microbiol 2009; 47(12): 4136-7.

 

Introducción: Las infecciones intrahospitalarias por enterococo resistente a vancomicina (ERV) son un problema en aumento. Esta resistencia esta mediada por la presencia de al menos seis tipos de operones de resistencia (varí). Los tipos vanA y vanB (Bl, B2 y B3) son los más importantes clínicamente y están ubicados en elementos genéticos móviles que en teoría pueden propiciar la diseminación horizontal de la resistencia. La detección de pacientes portadores se hace habitualmente por medio de cultivo selectivo pero se han desarrollado técnicas de reacción de polimerasa en cadena (RPC) que permiten acortar los tiempos de detección y teóricamente mejorar la sensibilidad.

Método: Se comparó el rendimiento de una técnica comercial de RPC en tiempo real (LightCy cler VRE detection kit®, Roche) que detecta tanto vanA como vanB contra el cultivo selectivo en agar enterococcosel/vancomicina 6 mg/ml. El muestreo se realizó entre octubre 2004 y noviembre 2007 en un total de 30.367 muestras pertenecientes a 12.983 pacientes con riesgo de colonización. Se incluyeron además pacientes hospitalizados a través del servicio de urgencias y pacientes en que se solicitaba por otras razones estudio de toxina de Clostridium difficile.

Resultados: Por cultivo se encontró una prevalencia de 1,07 y 0,27% de ERV vanA y vanB respectivamente. La detección por RPC de vanA mostró una sensibilidad (S) de 73% y una especificidad ( E) de 99,6%. Para vanB, la sensibilidad y especificidad de la RPC fueron de 85 y 84%. En otras palabras, por cultivo se encontraron 82 casos de ERV vanB contra 4.925 casos por RPC. Aplicado en esta población el valor predictor de la RPC para ERV vanB alcanzó sólo al 1,42%.

Discusión: La discordancia entre los resultados obtenidos por cultivo y RPC para ERV vanB, que se traduce en una baja especificidad de la RPC estaría dada por la presencia de transposones con los genes vanB en especies habituales de la microbiota anaerobia intestinal como son Clostridium spp,Eggerthella lentay Ruminococcus spp. Este exceso extremo de positividad de la RPC para vanB no sería atribuible a una mejor sensibilidad de la RPC y excede lo que se esperaría utilizando incluso técnicas de cultivos más sensibles como las conpre-enriquecimiento en medios líquidos.

Comentario: Si bien puede haber algunas consideraciones metodológicas sobre la aplicabilidad de este estudio a la realidad de algunos hospitales chilenos, como es la inclusión de pacientes internados primariamente a través del servicio de urgencias, la poca definición que se hizo de la población vigilada y las diferentes prevalencias de portación de ERV vanA o vanB, cabe destacar algunos puntos de los resultados obtenidos con esta técnica de RPC comercial. Primero, que la S de la técnica de RPC no resultó ser 100%, es decir, existieron casos que sólo fueron diagnosticados por cultivo. Segundo, que la E en el caso de RPC para vanA fue excelente; sin embargo, para vanB fue baja lo cual puede deberse por una parte a que se detectaron casos "verdaderos" de portación por RPC que no se detectaron en cultivos por tratarse de pacientes con una carga bacteriana más baja pero que, además, como señalan los autores, puede en gran parte explicarse por la detección de otros géneros bacterianos por la técnica de RPC12. En Chile, dependiendo de la institución, hay una presencia variable de ERV vanA o vanB y se ha demostrado la presencia del transposon Tn5382, que lleva el gen vanB2 en cepas de ERV de diseminación clonal en diversos hospitales3 por lo que la implementación de esta técnica llevaría por una parte a un aumento importante de la detección de portadores pero, por otro lado, a la implementación de medidas de aislamiento innecesarias en muchos pacientes, con las consecuencias sobre manejo de personal y costos que esto implica. Tercero, y dado lo anterior, es necesario destacar la importancia que tiene evaluar detenida y localmente las características de nuevas técnicas diagnósticas a utilizar, en este caso en particular, la especificidad analítica, antes de decidir su implementación que puede resultar ser más costosa o que finalmente puede llevar a gastos imprevistos e innecesarios en medidas de control de infecciones.

Referencias

1.- Ballard S A, Grabsch E A, Johnson P D R, Grayson M L. Comparison of three primer sets for identification of vanB gene carriage in feces and correlation with carriage of vancomycin-resistant enterococci: interference by vanB-containing anaerobic bacilli. Antimicrob. Agents Chemother. 2005;49:77-81.        [ Links ]

2.- Young H L, Ballard S A, Roffrey P, Grayson M L. Direct detection of va«B2 using the Roche LightCycler vanA/B detection assay to indicate vancomycin resistant enterococcal carriage-sensitive but not specific. J Antimicrob Chemother 2007; 59: 809-10.        [ Links ]

3.- López M, Hormazábal J C, Maldonado A, Saavedra G, Baquero F, Silva J, Torres C, del Campo R. Clonal dissemination of Enterococcus faecalis ST201 and Enterococcus faecium CC17-ST64 containing Tn5382-vanB2 among 16 hospitals in Chile. Clin Microbiol Infect 2009; 15 (6): 586-8.        [ Links ]

 

Francisco Silva O.
Hospital Clínico Universidad de Chile
Comité de Microbiología Clínica
Sociedad Chilena de Infectología

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