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Revista chilena de infectología

versión impresa ISSN 0716-1018

Rev. chil. infectol. vol.31 no.1 Santiago feb. 2014

http://dx.doi.org/10.4067/S0716-10182014000100004 

Microbiología

 

Actividad antifúngica de melanina en cepas clínicas de Candida spp.

Antifungal activity of melanin in clinical isolates of Candida spp.

 

Marisol Fuentes, Romané Hernández, Diego Gordillo, José Amaro, Mary A. Falconer, Claudio Alburquenque y Cecilia V. Tapia

Facultad de Medicina, Universidad de Chile, Santiago.
Instituto de Ciencias Biomédicas, Programa de Microbiología y Micología, (MF, RH, DG, JA, MF, CT).
Universidad Mayor, Santiago, Chile.
Escuela de Tecnología Médica (CA).

No existen conflictos de interés Fuentes de financiamiento: Fondos internos de Clínica Dávila, Proyecto Fondecyt de Iniciación 11110160.

Correspondencia a:


Background: Melanocytes are cells located in epidermis and mucous membranes that synthesize melanin and cytokines. It is known that melanin has antimicrobial activity and that melanocytes are melanized in presence of microbial molecules. Objective: To study the antifungal activity of melanin on Candida spp. Methodology: The minimum inhibitory concentration (MIC) to melanin was determined in 4 Candida ATCC strains (C. albicans SC5314, C. parapsilosis 22019, C. glabrata 2001, C. krusei 6258) and 56 clinical isolates of Candida spp. (33 C. albicans, 12 C. glabrata, 3 C. famata, 3 C. krusei, 3 C. parapsilosis, 2 C. tropicalis) using a broth microdilution method. In addition, the antifungal activity of melanocytes and mice melanoma cells was tested against C. albicans. Results: Melanin inhibited the tested isolates, including the susceptible dose-dependent and fluconazole-resistant strains; MIC range and MIC50 were 0.09-50 μg/mL and 6.25 μg/mL, respectively. Pigmented cells lysates inhibited C. albicans. Conclusions: Melanin is able to inhibit clinical isolates of Candida spp. Melanization could be an important protective mechanism of melanocytes.

Key words: Melanin, melanocyte, antifungal activity, Candida spp.


Resumen

Introducción: Los melanocitos son células presentes en piel y en mucosas que sintetizan melanina, además de citoquinas. Es sabido que melanina presenta actividad antimicrobiana y que los melanocitos se melanizan al ser expuestos a moléculas microbianas. Objetivo: Estudiar la actividad antifúngica de melanina en cepas clínicas de Candida spp. Metodología: Se midió la concentración inhibitoria mínima (CIM) a melanina, de 4 cepas de Candida ATCC (C. albicans SC5314, C. parapsilosis 22019, C. glabrata 2001 y C. krusei 6258) y 56 aislados clínicos de Candida spp. (33 C. albicans, 12 C. glabrata, 3 C. famata, 3 C. krusei, 3 C. parapsilosis, 2 C. tropicalis) mediante un método de microdilución en caldo. Además se estudió el efecto antifúngico de lisados de melanocitos y células de melanoma de ratón en C. albicans. Resultados: Melanina inhibió las cepas analizadas, incluso cepas susceptibles dosis-dependiente y resistentes a fluconazol, siendo los rangos de CIM y CIM50 de 0,09-50 μg/mL y 6,25 μg/ mL, respectivamente. Los lisados de células pigmentadas inhibieron C. albicans. Conclusiones: Melanina es capaz de inhibir cepas clínicas de Candida spp. La melanización podría ser un importante mecanismo protector de los melanocitos.

Palabras clave: Melanina, melanocito, actividad antifúngica, Candida spp.


 

Introducción

Los melanocitos son células dendríticas derivadas de la cresta neural que se localizan en el estrato basal de la epidermis interactuando con los queratinocitos en una razón de 1:30. Su principal función es la síntesis de un pigmento denominado melanina1,2.

Melanina es el nombre que recibe un amplio grupo de pigmentos con propiedades similares que se encuentra en la mayoría de los seres vivos; son polímeros de alto peso molecular muy estables, con polaridad negativa, hidrófobos e insolubles en agua3,4.

Los pigmentos de melanina se forman por polimerización oxidativa de compuestos fenólicos; en los melanocitos humanos se producen principalmente DOPA-melaninas, también denominadas eumelaninas, las cuales se caracterizan por ser pigmentos de color oscuro5. La melanogénesis es un proceso que ocurre en organelos especializados llamados melanosomas, que se forman en el aparato de Golgi. Una vez sintetizada la melanina, ésta es transferida a los queratinocitos mediante exocitosis1,2,6,7.

Actualmente, no se conoce completamente el rol de la melanina en la piel y otros tejidos animales8. La principal función de la melanina en la piel humana parece ser la protección frente a los radicales libres formados por la radiación UV9,10. Sin embargo, existen estudios que rechazan esta hipótesis exponiendo que la melanina no resultaría efectiva por sí sola para evitar la formación de dímeros de pirimidina por radiación UV10,11.

Con respecto a otras funciones que se le atribuyen a melanina, estudios posteriores han demostrado una relación genética y bioquímica entre los procesos de inmunidad y melanización10. Dichos estudios han reportado que, tanto los melanocitos como la melanina, inhibirían la proliferación bacteriana y fúngica en la dermis y epidermis12.

Las especies del género Candida son levaduras comensales que forman parte de la microbiota gastrointestinal y genital, aunque bajo ciertas condiciones pueden transformarse en patógenos, produciendo una infección llamada candidiasis. El agente etiológico más prevalente es Candida albicans; sin embargo, se han aislado otras especies como C. glabrata, C. tropicalis, C. parapsilosis y C. krusei13.

Existe evidencia que sugiere que en población de piel oscura existiría una mayor resistencia a infecciones por Trychophyton mentagrophytes y C. albicans14. Dados los antecedentes expuestos, en el presente trabajo se desea evaluar si la melanina sintética, lisados de melanocitos y células de melanoma, presentan actividad antifúngica en cepas clínicas de Candida spp.

Materiales y Métodos

Cepas

Se utilizaron cepas de Candida spp. ATCC (C. albicans SC5314, C. parapsilosis 22019, C. glabrata 2001 y C. krusei 6258) y 56 cepas provenientes de aislados clínicos de un cepario del Laboratorio de Clínica Dávila, las cuales fueron previamente identificadas a nivel de especie, mediante tubo germinativo, microcultivo y API 32CAUXTM (Biomerieux). Las cepas correspondieron a C. albicans (n: 33), C. glabrata (n: 12), C. famata (n: 3), C. krusei (n: 3), C. parapsilosis (n: 3) y C. tropicalis (n: 2). Se incluyeron en el estudio cepas susceptibles, susceptibles dosis dependiente (SDD) y resistentes a fluconazol. El uso de las cepas fue aprobado por el Comité de Ética de Clínica Dávila.

Microdilución en caldo

Se realizó un ensayo de microdilución en caldo, adaptando el estándar EUCAST-AFST para medir la concentración inhibitoria mínima (CIM), utilizando distintas concentraciones de melanina sintética (Sigma-Aldrich®). Se prepararon placas de RPMI 1640 2x a pH 7,0 con concentraciones máximas de melanina de 50 μg/mL. Las cepas se sembraron en agar Sabouraud y se incubaron a 37 °C durante 24 h. Posteriormente se preparó un inóculo de cada cepa (Mc Farland de 0,5) y se realizó una dilución 1:1000; luego se sembraron 100 μL de esta dilución en las placas de microdilución. Las placas se incubaron a 37 °C durante 24 h, en ausencia de luz. Finalmente, se realizó una lectura visual de las CIMs considerando el 50% de inhibición de crecimiento. Adicionalmente se tomaron 3 μL de muestra de los pocillos y se sembró en un agar Sabouraud para evaluar si la actividad inhibitoria es fungistática o fungicida.

Actividad antifúngica de lisados de melanocitos

Se hicieron crecer melanocitos humanos HEMa-LP (Invitrogen®) en Medio 254 (Gibco®) alcanzando un total de 106 células. Luego, las células fueron estimuladas con 50 μg/mL de proteínas de extractos de C. albicans (blastoconidia e hifas) por 72 horas, y posteriormente los melanocitos fueron centrifugados a 800 rpm por 10 min. Los pellets fueron resuspendidos en 1 mL de PBS para luego ser lisados a 95° C durante 30 min. Adicionalmente se preparó una suspensión de C. albicans ATCC SC5314 a una escala de Mc Farland de 0,5 y se realizó una dilución de 1:1.000; se tomaron 10 μL del inóculo diluido y se agregaron a 500 μL de extracto lisado de melanocitos. Posteriormente se hizo una siembra en rastrillo de 50 μL de las soluciones de trabajo en agar Sabouraud en triplicado a las 0,5; 2 y 24 h de incubación a 37 °C. Finalmente, se realizó recuento de ufc (unidad formadora de colonias). El mismo experimento fue realizado con células de melanoma de ratón B16 aportadas por Mercedes López del Programa de Inmunología, ICBM, Facultad de Medicina, Universidad de Chile y queratinocitos humanos HEKa(Invitrogen®) como control.

Análisis estadístico

El análisis estadístico se hizo usando comparación de medias mediante t-Student de dos colas y ANOVA, utilizando el programa GraphPad 5.0.

Resultados

En el ensayo de susceptibilidad se observó un efecto inhibitorio de melanina sintética en la totalidad de las cepas analizadas (Figura 1), lo cual se verificó en la siembra en agar Sabouraud (Figura 2). Los rangos de CIM fueron 0,09-50 μg/mL y la CIM a la cual se inhibió 50% del total de cepas analizadas (CIM50) fue de 6,25 μg/mL. Además, se observó que melanina tuvo actividad antifúngica en cepas susceptibles, susceptibles dosis-dependiente y resistentes a fluconazol, tanto en las cepas de C. albicans (Tabla 1) como en cepas no-albicans (Tabla 2).

 

Figura 1. Efecto inhibitorio de melanina sintética sobre el crecimiento de cepas de Candida spp. CC: control de crecimiento, CE: control de esterilidad.

 

Figura 2. Verificación en agar Sabouraud del efecto inhibitorio de melanina sintética sobre el crecimiento de dos cepas de Candida spp. Los círculos indican el CC (Control de crecimiento) y siembra del pocillo con concentración de melanina de 50 μg/mL

Tabla 1. Concentraciones inhibitorias mínimas (CIMs) a melanina y fluconazol en cepas de Candida albicans provenientes de aislados clínicos
 

Tabla 2. Concentraciones inhibitorias mínimas (CIMs) a melanina y fluconazol en cepas de Candida no-albicans provenientes de aislados clínicos.
 

Al analizar la distribución de las CIMs, tanto en cepas clínicas como en cepas ATCC, de acuerdo a la especie se encontró que C. glabrata presentó CIMs más bajas en promedio que C. albicans (p < 0,0001), mientras que C. krusei presentó CIMs más altas a melanina (p = 0,0085) (Figura 3).

 
Figura 3. Representación gráfica de CIMs a melanina de cepas clínicas de C. albicans, C. glabrata, C. krusei y C. parapsilosis. ***p < 0,0001; **p < 0,01. CIM expresada en μg/ml.

En los experimentos de inhibición de C. albicans, utilizando lisados de melanocitos estimulados con blastoconidias e hifas, se observó una inhibición del crecimiento de C. albicans, expresado en ufc, a las 2 horas de exposición, en comparación a las 0,5 horas, cuya diferencia fue estadísticamente significativa (Figura 4). Aun cuando C. albicans mostró un mayor crecimiento a las 24 horas de exposición en relación a las 0,5 y 2 h, se observó una disminución significativa del crecimiento de la levadura al estar expuesta a lisados de melanocitos estimulados con hifas, en comparación a lisados no estimulados y estimulados con blastoconidias.

 

Figura 4. Recuento de colonias de C. albicans expuesta a lisados de melanocitos no estimulados, estimulados con extracto de blastoconidia y con extracto de hifa. A) Recuentos a las 0,5, 2 y 24 horas. B) Fotografía de recuentos en placa de UFC a las 24 h de incubación. *** p< 0,0001.

Al comparar recuentos de colonias de C. albicans expuesta a lisados de melanocitos y queratinocitos se observó que, aunque a las 0,5 horas de exposición a melanocitos hubo un mayor crecimiento de C. albicans, mientras que a las 2 y 24 horas, el recuento fue menor (Figura 5).

 

Figura 5. Recuento de colonias de C. albicans expuestas a lisados de melanocitos y queratinocitos, a las 0,5; 2 y 24 h de exposición.

Finalmente, para evidenciar mejor las diferencias entre células con melanina y sin melanina, cepas de C. albicans fueron expuestas durante 24 horas a lisados de células de melanoma de ratón y queratinocitos. Adicionalmente, para estimar el contenido de melanina, se midió la densidad óptica (OD) a 492 nm de cada lisado. Se observó que a una mayor OD hay una disminución de las ufc recuperadas luego de exponer cepas de C. albicans a lisados. (Figura 6).

 

Figura 6. Relación entre el OD492 y el recuento de colonias de C. albicans expuesta a lisados de queratinocitos y células de melanoma de ratón B16 A) OD de lisados celulares. B) Recuento de colonias de C. albicans expuesta a lisados celulares. *p<0,05; ns: no significativo.

Discusión

Numerosos estudios han demostrado que la función de los melanocitos no sólo comprende la protección del daño por radiación UV, sino que además, actúan como células inmunes que reconocen estructuras conservadas presentes en los microorganismos, llamadas PAMPs (pathogen-associated molecular patterns); es así como en algunos estudios se ha descrito que la melanina, sintetizada en los melanocitos, presenta actividad antimicrobiana y que los melanocitos al ser expuestos a PAMPs incrementan la síntesis de melanina, por lo que el proceso de melanización podría ser importante como mecanismo protector de la respuesta inmune innata15.

Aunque la melanina es producida por hongos patógenos y se considera un factor de virulencia16,17, también presenta actividad antimicrobiana1,8. Existen diversos tipos de melanina, las cuales además difieren estructuralmente entre las especies fúngicas17, pudiendo otorgarle diversas propiedades.

En el presente trabajo se evaluó la actividad antifúngica de la melanina frente a cepas clínicas y ATCC de Candida spp., demostrando que la melanina presenta actividad anti-fúngica a concentraciones iguales o inferiores a 50 μg/mL.

Además, la melanina fue capaz de inhibir el crecimiento de cepas de Candida albicans y no-albicans sensibles dosis dependiente (SDD) y resistentes a fluconazol, antifúngico más utilizado a nivel clínico en nuestro país18. Cabe destacar que C. glabrata, especie que tiende a presentar mayor resistencia a los antifúngicos convencionales, fue la especie más sensible a melanina, lo que sugiere un mecanismo defensivo importante de piel y mucosa, además de una probable alternativa de tratamiento interesante de estudiar.

Los lisados de melanocitos mostraron un efecto inhibitorio sobre el crecimiento de C. albicans a las 2 horas de exposición. Por otra parte, a las 24 h se observó que melanocitos estimulados con hifas inhiben mucho más el crecimiento de C. albicans que melanocitos estimulados con blastoconidias. Esto es interesante pues probablemente el estado patogénico de C. albicans (hifa), induce una mayor melanización, lo cual sugiere que melanocitos podrían discriminar entre blastoconidia e hifa, al igual que otras células inmunes no profesionales como células epiteliales19,20.

Adicionalmente, se observó que células con un alto contenido de melanina, como las células de melanoma de ratón B16, inducen una mayor inhibición del crecimiento de C. albicans, principalmente si éstas fueron estimuladas con extractos de la levadura.

El mecanismo de acción de la melanina no se conoce aún; sin embargo, se ha descrito actividad inhibitoria y fungicida de intermediarios de quinonas reactivas producidas durante la biosíntesis de melanina per se y/o por la producción de peróxido de hidrógeno debido a la estructura aromática de estos componentes1. También hay evidencia que sugiere que la melanina es capaz de absorber varios compuestos orgánicos e inorgánicos actuando como un "cationito"; mediante esta propiedad, la melanina es capaz de unir toxinas bacterianas como la toxina botulí-nica8 y podría absorber diferentes compuestos de la pared celular de C. albicans o directamente romper la membrana plasmática. Se requieren más estudios para comprender cabalmente el mecanismo de acción de melanina.

En base a los resultados anteriormente expuestos, es posible concluir que la melanina presenta una actividad antifúngica in vitro, capaz de inhibir cepas susceptibles, dosis-dependiente y resistentes a fluconazol, siendo C. glabrata la especie más sensible a melanina en este estudio. El efecto inhibitorio parece ser fungistático principalmente frente a la exposición con lisados de células melanizadas.

Agradecimientos. Agradecemos al Curso Unidades de Investigación, de la Facultad de Medicina Universidad de Chile versión 2012 por aportar recursos para realizar este trabajo y a Anna Di Nardo, de la Universidad de California San Diego (UCSD), San Diego, USA por apoyar el inicio de esta línea de investigación.

 

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Recibido: 26 de diciembre de 2012
Aceptado:
23 de noviembre de
2013

Correspondencia a: Cecilia V. Tapia Paredes cetapia@med.uchile.cl