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Gayana (Concepción)

versión impresa ISSN 0717-652Xversión On-line ISSN 0717-6538

Gayana (Concepc.) vol.82 no.2 Concepción dic. 2018

http://dx.doi.org/10.4067/S0717-65382018000200139 

ARTÍCULO ORIGINAL

Efectos adversos provocados en la descendencia de Drosophila melanogaster Meigen inducidos por antibióticos usados en salmonicultura

Adverse effects caused in offspring of Drosophila melanogaster Meigen induced by antibiotics used in salmon farming

Oscar A. Benavides

Fidelina González1 

Katia Sáez3 

Ruth Chávez1 

Magda Hernández2 

1Departamento de Biología Celular, Facultad de Ciencias Biológicas, Universidad de Concepción, Casilla 160-C, Concepción, Chile.

2Departamento de Microbiología, Facultad de Ciencias Biológicas, Universidad de Concepción, Casilla 160-C, Concepción, Chile.

3Departamento de Estadística, Facultad de Ciencias Físicas y Matemáticas, Universidad de Concepción, Casilla 160-C, Concepción, Chile.

RESUMEN

La administración de antibióticos en las salmonicultoras en Chile facilita la acumulación en el ambiente marino afectando la biota. En 2016 se utilizaron 382 toneladas de antibióticos (oxitetraciclina y florfenicol). Se evaluó la actividad biológica de florfenicol y oxitetraciclina en larvas de Drosophila melanogaster Meigen en condiciones de laboratorio. Se aplicó un diseño experimental completamente aleatorio en los bioensayos con 10 tratamientos (0,3; 0,6 y 1,2 mg/mL de florfenicol y 0,3; 0,6; 0,8; 1,2; 1,6 y 3,2 mg/mL de oxitetraciclina) aplicados a la generación parental, con dos repeticiones. Se evaluó la mortalidad, efectos sobre el ciclo de vida, análisis de sustrato y observación de organismos en la generación parental y en dos generaciones sucesivas. Los resultados indican que a mayor concentración de antibiótico aplicado a la generación parental, la mortalidad aumenta en la primera generación y los ciclos de vida se retrasan en las siguientes generaciones; además, aumenta la frecuencia de aparición de adultos con alteraciones morfológicas del ala; en el sustrato alimenticio cambia el color y el pH en todos los tratamientos. Ambos antimicrobianos tienen efectos adversos sobre el desarrollo de Drosophila melanogaster y sobre el medio de cultivo. El efecto de los antibióticos en la generación parental es heredable, en dos generaciones sucesivas, que tuvieron disminución en el número de crías e individuos con alas deformadas o ausentes. Los antibióticos afectarían directamente a la vida silvestre que rodea los centros de cultivo del salmón, lo que debería controlarse para evitar un daño ambiental importante.

PALABRAS CLAVES: Antibióticos; salmonicultura; bioensayos; Drosophila melanogaster

ABSTRACT

The administration of antibiotics by salmon farms in Chile, facilitates the accumulation in the marine environment, affecting the biota. In 2016, 382 tons of antibiotics (oxytetracycline and florfenicol) were used. In this atudy, the biological activity of florfenicol and oxytetracycline in larvae of Drosophila melanogaster Meigen, was evaluated under laboratory conditions. A completely randomized experimental design was applied in the bioassays with 10 treatments (0.3, 0.6 and 1.2 mg/mL of florfenicol and 0.3, 0.6, 0.8, 1.2, 1.6 and 3.2 mg/mL of oxytetracycline) applied to the parental generation, with two repetitions. Mortality, effects on the life cycle, substrate analysis and observation of organisms in the parental generation, and in two successive generations were evaluated. The results indicate that the higher the concentration of antibiotic applied to the parental generation, the mortality increases in the first generation and the life cycles are delayed in the following generations; in addition, it increases the frequency of appearance of adults with morphological alterations of the wing; the food substrate changes the color and pH in all treatments. Both antimicrobials have adverse effects on the development of Drosophila melanogaster and on the culture medium. The effect of antibiotics on the parental generation is inheritable, in two successive generations, that had decrease in the number of offspring and individuals with deformed or absent wings. Antibiotics would directly affect the wildlife surrounding the salmon farming centers, which should be controlled to avoid significant environmental damage.

KEYWORD: Antibiotics; salmon farming; bioassay; Drosophila melanogaster

INTRODUCCIÓN

En Chile, la salmonicultura se introdujo a principios del siglo XX. Los cultivos de salmón se intensificaron a gran escala, en los años 80 cuando el país se posicionó como el segundo productor mundial, después de Noruega (Barton & Floysand 2010; Muñoz 2009; Fortt et al. 2007; Soto & Norambuena 2004).

En el proceso productivo, los salmones crecen en agua salada y se reproducen en agua dulce (Salgado 2005). El transporte de salmones de un ambiente a otro, favorece el contacto entre diferentes poblaciones, facilitando la infección cruzada y contagio de enfermedades, provocando pérdidas económicas para la industria (Ibieta et al. 2011; Bravo et al. 2005). En el control de patógenos de cultivos intensivos, se mezcla antibióticos con el alimento ingerido por los peces (Sørum 2006; Bravo et al. 2005), sin embargo se recomiendan ajustes al protocolo para ser compatible con el entorno ambiental (Cabello 2003).

Los antibióticos inhiben el crecimiento (actividad bacteriostática) y/o matan bacterias (actividad bactericida), se emplean en el tratamiento de enfermedades en seres humanos y animales en cautiverio. Su uso ha ido en aumento en muchos países (Cabello 2006; Sarmah et al. 2006; Boxall et al. 2004). Se aplican directamente en el agua o en el alimento de los peces (Shao 2001; Hirsch et al. 1999). Los antibióticos o sus metabolitos y/o productos de degradación llegan al ambiente circundante causando efectos ecológicos adversos como selección de bacterias resistentes, toxicidad para la microflora (afectando la diversidad biológica del fitoplancton) y/o microfauna (afectando las comunidades de zooplancton) (Ferreira 2007; Christensen et al. 2006; Cabello 2006; Rigos et al. 2004; Wollenberger et al. 2000; Lützhøft et al. 1999). Estos cambios en la diversidad pueden afectar potencialmente la salud de los animales al causar inmunodepresión (Cabello 2003; Morris 1999).

La selección de bacterias resistentes provocada por el uso continuo de antimicrobianos ocasiona un problema sanitario que afecta a peces y seres humanos que los consumen (González et al. 2013, Miranda 2012; Millanao et al. 2011; Burridge et al. 2010). Las relaciones ecológicas se modifican, debido a la toxicidad para la vida silvestre (organismos invertebrados) planteando serias interrogantes sobre las especies que circundan los alrededores de las jaulas salmoneras (Salgado et al. 2015; Fortt et al. 2007; Halling-Sørensen et al. 2000; Dölz 2001; Baguer et al. 2000; Migliore et al. 1997; Coyne et al. 1997). Definidos como microcontaminantes ambientales (Le Bris & Pouliquen 2004), presentes en bajas concentraciones en el medio ambiente, tienen efectos probables a largo plazo por exposición de las sucesivas generaciones de poblaciones de especies en el ecosistema (Kümmerer 2009; Halling-Sørensen et al. 1998). El 80% de los antimicrobianos llegan al ambiente marino en forma no absorbida (Buschmann et al. 2012) a través de las excreciones de peces (Le & Munekage 2004; Burka et al. 1997; Capone et al. 1996), se acumulan depositándose por gravedad en los sedimentos circundantes a los cultivos (Buschmann et al. 2009; Pelletier et al. 2009; Sapkota et al. 2008; Sarmah et al. 2006). La circulación hídrica los distribuye a lugares alejados de los sistemas de cultivo, afectando a detritívoros y peces silvestres (robalos, cabrillas), que consumen los antibióticos a través de la ingesta alimentaria (Buschmann et al. 2009, 2006; Sørum 2006; Coyne et al. 1997; Kerry et al. 1996).

A nivel mundial existen 24 países productores, siendo los principales Noruega, Chile, Escocia y Canadá (FAO 2010). En los últimos 20 años han mejorado las prácticas de gestión y crianza de peces, para reducir el uso de antibióticos y modificar la forma de administración, por el riesgo para la salud humana y la biota marina. Las empresas salmoniculturas noruegas en 2007 utilizaron aproximadamente 0,0008 kg de antimicrobianos por cada tonelada de salmón producido. El mismo año en Chile se utilizó 1,4 kg por tonelada (Millanao et al. 2011; Burridge et al. 2010; Gómez 2009; SalmonChile 2008), 170 veces más que Noruega (Millanao et al. 2011; Burridge et al. 2010; Gómez 2009; Barrientos 2006; Millanao 2002). En el periodo 2011-2013 se utilizaron aproximadamente 995,49 toneladas de diversos agentes antibacterianos en Chile, de los cuales 450,7 toneladas corresponden sólo al año 2013. En 2014 aumentó un 25% llegando a 563,2 toneladas. En 2016, disminuyó a 382 ton, (31% menos que en 2015), en tanto en Noruega usaron 523 kg, produciendo el doble de salmones que en Chile. En Chile, un 96% se administró en centros marinos y un 4% en centros de agua dulce (SERNAPESCA 2017).

En la salmonicultura chilena hay un uso generalizado de dos antibióticos que comprende el 98% del volumen total de antibióticos, florfenicol (63%) y oxitetraciclina (35%), ambos de amplio uso veterinario (Millanao et al. 2011). Florfenicol es un antibacteriano bacteriostático sintético, de acción sistémica y amplio espectro de acción (Bravo et al. 2005). Oxitetraciclina pertenece al grupo de las tetracicilinas, es un bacteriostático que tiene actividad contra bacterias, incluyendo micoplasmas y rickettsias (Coyne et al. 1997; Capone et al. 1996). Drosophila melanogaster Meigen, es un insecto cosmopolita de casi 2 mm de largo, y por su alto índice de prolificidad y fácil manejo en el laboratorio presenta ventajas para la aplicación de un alto nivel de rigor estadístico en el análisis de los experimentos (Artigas 1998). Presenta diferentes etapas de desarrollo (huevo, tres estadios larvales, pupa e imago) (Demerec & Kaufmann 1969). La fase larvaria en medios de cultivo tiene la potencialidad de ser sometida a bioensayos con diferentes condiciones experimentales, que pueden ser evaluadas en la fase adulta y en generaciones sucesivas. Los impactos ambientales de la salmonicultura en el país, en relación con su nivel de producción han sido analizados desde una mirada objetiva por varios autores (Guillén et al. 2012; Buschmann et al. 2009; Kim et al. 2008). Investigar, regular y educar a quienes son responsables en esta materia, son los desafíos a mediano y a corto plazo, de lo contrario nuestra biota marina que sustenta cadenas tróficas y nuestros recursos naturales, se verán cada vez más expuestas a estos agentes que alteran sus ciclos normales de desarrollo. El objetivo de esta investigación es evaluar la actividad biológica del florfenicol y la oxitetraciclina, dos de los antibióticos más usados en Salmonicultura en Chile, sobre una generación parental de insectos (larvas de Drosophila melanogaster) y su descendencia bajo condiciones de laboratorio y evaluar el efecto en parentales y dos generaciones sucesivas. Usando este modelo se puede establecer el efecto potencial de los antibióticos sobre la vida en el entorno próximo o alejado de las jaulas salmoneras.

MATERIALES Y MÉTODOS

ANTIBIÓTICOS

Florfenicol es un antibiótico de amplio espectro (Samuelsen & Bergh 2004; Nordmo et al. 1994). A pH 7, la solubilidad (en agua) de este compuesto es de 1,32 mg/mL. En peces, el régimen de tratamiento recomendado es de 10 mg/kg de florfenicol durante 10 días administrado en el alimento (San Martin et al. 2015). El florfenicol se mantuvo a temperatura ambiente, entre 15 y 30°C, en lugar seco y protegido de la luz solar.

La oxitetraciclina es un antibiótico de amplio espectro, utilizado para el tratamiento de enfermedades bacterianas en acuicultura, por su eficacia, bajo costo y amplio espectro de acción (Reed et al. 2004; Ueno et al. 2004; Miranda & Zemelman 2002; Rigos et al. 2002). En peces, el régimen de tratamiento recomendado es de 94 mg/kg de oxitetraciclina por un período de 10 días administrado en el alimento (San Martin et al. 2015). Esta substancia (Veterquimica SA) se mantuvo a temperatura ambiente, entre 15 y 30°C, en lugar seco y protegido de la luz solar previo a su uso en este estudio.

DETERMINACIÓN DE LAS CONCENTRACIONES DE ANTIBIÓTICOS USADAS EN BIOENSAYOS

Cien larvas en estadío II de Drosophila melanogaster, se pesaron en balanza analítica (marca Revel Electronic Balance, modelo XY2000C). La concentración de florfenicol usada para los ensayos se determinó estableciendo una relación entre la dosis por kg de pez (San Martín et al. 2015) y el peso promedio de 100 larvas. La concentración equivalente calculada para larvas de Drosophila melanogaster es de 0,3 mg/mL. En los bioensayos se usó el doble (0,6 mg/mL) y el cuádruple (1,2 mg/mL) de la concentración calculada sobre la base de la dosificación recomendada (San Martin et al. 2015). La concentración de oxitetraciclina usada en peces y calculada sobre la base del peso de las larvas de Drosophila melanogaster equivale a 0,8 mg/mL, 1,6 mg/mL y 3,2 mg/ mL. El control se hizo con agar-agar, usado como matriz sin antibiótico, sobre la mezcla del alimento.

CONCENTRACIÓN DE AGAR-AGAR EN MATRIZ QUE CONTIENE EL ANTIBIÓTICO EN EL MEDIO DE CULTIVO DE LARVAS DE DROSOPHILA MELANOGASTER

Para asegurar que hay una distribución homogénea de la concentración del antibiótico sobre el medio gelatinoso que contiene el alimento de la larva, es necesario incluirlo en una matriz de agar. Con el fin que la larva pueda a la vez entrar en contacto y alimentarse incorporando el antibiótico e introducirse con facilidad en este medio, para asegurar reproducibilidad del experimento, la incorporación del antibiótico en la ingesta de la larva y su alimentación, necesaria para su crecimiento y metamorfosis. La concentración del agar-agar a usar, va a determinar la fuerza del coloide y con esto las restricciones potenciales a la capacidad de excavación de larvas (Godoy-Herrera 2001) en el gel y probablemente la absorción a nivel del digestivo. Se ensayaron las concentraciones de 0,10, 0,20 y 0,40 g de agar-agar en 100 mL de agua destilada. Se vertieron alícuotas de 5 mL en placas de Petri y luego de formado el gel, y se depositaron 5 larvas estadío II en cada una, para observar y contar, después de una hora, cuantas habían atravesado el sustrato.

EVALUACIÓN DE LA DISTRIBUCIÓN HOMOGÉNEA DE ANTIBIÓTICOS EN LA MATRIZ DE AGAR-AGAR

Alícuotas de 5 mL del gel fueron vertidas en tubos de centrifuga (Falcón) y mezcladas con el antibiótico para cada concentración, en triplicado, con agitación en Vórtex, durante dos minutos para asegurar distribución homogénea del antibiótico en el gel. Se vertió en placas Petri y se dejó reposar. Este preparado fue utilizado para la elaboración de pruebas de susceptibilidad por difusión en agar, utilizando discos de agar que contiene el antibiótico vertido sobre la superficie del medio de cultivo de larvas de Drosophila melanogaster, con el fin de verificar la distribución homogénea del antibiótico en el medio de cultivo de larvas de Drosophila melanogaster.

PRUEBAS DE SUSCEPTIBILIDAD POR DIFUSIÓN EN AGAR, UTILIZANDO DISCOS DE AGAR DEL MEDIO DE CULTIVO DE LARVAS DE DROSOPHILA MELANOGASTER

La distribución homogénea del antibiótico, en la matriz de agar-agar utilizada que contiene el antibiótico, se comprobó con pruebas de susceptibilidad por difusión en agar del antibiótico, en discos de agar-agar tomados con sacabocados, desde distintos puntos del gel contenido en la placa Petri, para cada antibiótico por separado y en triplicado, en las tres concentraciones ensayadas y en el control, utilizando 3 cepas bacterianas mantenidas en el Cepario del Departamento de Microbiología de la Facultad de Ciencias Biológicas de la Universidad de Concepción (E. coli K-12, E. coli SI y S. aureus 6538P), a 37 °C por 18 h de incubación en estufa, al cabo del cual se midió el diámetro de los halos de inhibición. Estos ensayos se realizaron de acuerdo a recomendaciones sugeridas por el Instituto de Salud Pública (Araya et al. 2002).

GRUPO PARENTAL DE DROSOPHILA MELANOGASTER

Se utilizó como modelo biológico la cepa silvestre Drosophila melanogaster (cepa “santiago”) disponible en el Cepario de Drosophila melanogaster, del Laboratorio de Genética del Departamento de Biología Celular, Facultad de Ciencias Biológicas, Universidad de Concepción, Chile. Esta cepa se cultiva fácilmente en botellas estériles con medio de cultivo gelatinoso para alimentación, crecimiento y desarrollo de las larvas. Una pareja puede tener 200 ó más descendientes, y puede obtenerse una generación cada 10 ó 14 días. La temperatura óptima de cultivo es a 25° C (Storer et al. 2001). La fase larvaria Drosophila melanogaster consiste de tres estadios. Entre 24 y 96 h de desarrollo a partir de huevo, se obtienen las larvas en estadío II, usadas para iniciar los bioensayos. La larva de Drosophila se alimenta ingiriendo el alimento con una gran voracidad (Sewell et al. 1975), hasta alcanzar un peso mínimo para pupar y dar origen al adulto (Powell 1997).

SUSTRATO

El medio de cultivo utilizado para el mantenimiento de Drosophila melanogaster se elaboró con agua destilada, agar-agar, sémola, levadura seca, ácido salicílico, azúcar y mezcla ácida (NaNO3, K2HPO4, KCl, MgSO4 y FeSO4). La mezcla se introdujo en frascos de cultivo (30 mL aprox.) esterilizados en autoclave (Demerec & Kaufmann 1969; DeBach 1968).

BIOENSAYOS DE LOS ANTIBIÓTICOS EN LARVAS DE DROSOPHILA MELANOGASTER

Para evaluar el efecto de los antibióticos se realizaron bioensayos de toxicidad, en larvas estadío II de la cepa silvestre (denominada cepa “santiago”) de Drosophila melanogaster, siguiendo el protocolo desarrollado anteriormente (Suazo et al. 2012). La reproducción de los insectos se llevó a cabo en frascos de vidrio de 250 mL de capacidad, tapados con un algodón hidrófobo, envuelto en una gasa con el fin de permitir el intercambio gaseoso. Estos frascos se mantuvieron en una cámara con las condiciones óptimas de desarrollo de los individuos, a una temperatura aproximada de 25° C y con iluminación normal. Se controló la hidratación y la aparición de hongos en el medio de cultivo. De esta forma se pudo asegurar que la mortalidad obtenida es únicamente producto de la toxicidad del tratamiento evaluado.

HOMOGENEIZACIÓN GENÉTICA DE LA CEPA

Se realizó la homogeneización genética de la cepa para disponer de una población de individuos estandarizados desde el punto de vista genético y fenotípico. En un frasco con medio de cultivo se depositaron los parentales (P) cinco hembras vírgenes y cinco machos, de la cepa silvestre “santiago”. Tras emerger las larvas de tercer estado o pupa se eliminaron los parentales, dejando en el frasco sólo la progenie obtenida. De esta progenie (F1) se tomaron 10 hembras y 10 machos y se depositaron en un nuevo frasco de cultivo. Siguiendo la metodología anterior se obtuvo la segunda generación filial (F2). De esta nueva progenie, se recolectaron 10 parejas y realizando los mismos procedimientos se obtuvo al final de este nuevo proceso una tercera generación (F3), con cuyos individuos se experimentó.

TRATAMIENTOS

Se evaluó la actividad biológica de florfenicol y oxitetraciclina en bioensayos en triplicado. En los ensayos usando florfenicol, las concentraciones fueron de 0,3 mg/ mL, 0,6 mg/mL y 1,2 mg/mL. Las concentraciones de oxitetraciclina ensayadas fueron de 0,3 mg/mL, 0,6 mg/mL, 0,8 mg/mL, 1,2 mg/mL, 1,6 mg/mL y 3,2 mg/mL.

El grupo control contenía en el frasco de cultivo la mezcla alimenticia y sobre el alimento la matriz de agar-agar, sin antibiótico.

En cada frasco de vidrio (250 mL) se introdujeron 50 larvas de Drosophila melanogaster en estado II de la cepa silvestre homogeneizada genéticamente y se mantuvieron alrededor de 16 días en una cámara con las condiciones óptimas para el desarrollo de los individuos. Los tratamientos contemplaron dos repeticiones en el tiempo con el fin de disminuir los errores experimentales (Park et al. 2004).

TASA DE MORTALIDAD DE LA GENERACIÓN PARENTAL

La cuantificación de los adultos vivos se inició al noveno día, hasta cumplirse el día 16 en el tratamiento y el control. Una diferencia de 50 larvas por tratamiento menos los adultos vivos se asumieron como la mortalidad.

DOSIS EQUITÓXICAS

Una vez obtenida la mortalidad, se estimó la concentración letal 50 % (CL50) con el procedimiento Probit y se transformaron las dosis a logaritmos y los porcentajes de mortalidad a valores Probit, según tablas de transformación (Finney 1952). Para la interpretación de estos resultados, se calculó la regresión lineal (Y = a + bx) entre el logaritmo de la dosis (x) y los valores Probit (y). Una vez obtenida la regresión, se estimó con el modelo el valor para un 50 % de mortalidad, los que en unidades probit correspondió a 5 (Finney 1952; Finney & Stevens 1948).

TABLA 1 Pruebas de susceptibilidad por difusión en agar de la matriz de agar que contiene el antibiótico en el medio de cultivo de larvas de Drosophila melanogaster (antibiótico: florfenicol) para tres cepas bacterianas: S. aureus, E. coli K-12 y E. coli SI. / Susceptibility tests by agar diffusion of the agar matrix containing the antibiotic in the culture medium of Drosophila melanogaster larvae (antibiotic: florfenicol) for three bacterial strains: S. aureus, E. coli K-12 and E. coli SI. 

TASA DE NACIMIENTOS DE LA PRIMERA Y SEGUNDA GENERACIÓN FILIAL

De los parentales sobrevivientes en cada uno de los tratamientos se recolectaron 5 parejas, las que fueron depositadas en un nuevo frasco de cultivo sin antibiótico y otras 5 parejas fueron reintroducidas en el frasco de cultivo con antibiótico. Los individuos restantes fueron eliminados. El registro de datos de la primera generación filial se inició 10 días después de la siembra de los individuos y se extendió hasta 16 días después. Los recuentos de adultos por sexo se llevaron a cabo cada tres días. Para la segunda generación filial, se siguieron los mismos pasos antes descritos.

DISEÑO EXPERIMENTAL Y ANÁLISIS ESTADÍSTICO

El diseño experimental fue completamente aleatorio. Los datos porcentuales alcanzados fueron normalizados usando la función arcoseno. Posteriormente se realizó un análisis de varianza (ANDEVA) y una prueba de comparación de medias de los tratamientos con un nivel de confianza del 95 % (P < 0,05) mediante la prueba de Tukey con el programa estadístico Infosat (Di Rienzo et al. 2015).

ANÁLISIS DE SUSTRATO

Transcurridos 30 días de iniciado el tratamiento, se evaluó el sustrato midiendo el pH y realizando una prueba de susceptibilidad por difusión en agar, usando discos del sustrato. Para medir el pH de cada sustrato, se utiliza cintas de pH (Merck). Para las pruebas de susceptibilidad por difusión en agar, de cada frasco, se utilizaron las cepas bacterianas Escherichia coli K-12 y Escherichia coli SI.

MORFOLOGÍA Y ESTRUCTURA

Mediante el uso de una lupa estereoscópica se observaron los insectos sometidos a ensayo, tratamiento y control para registrar la morfología y la estructura con imágenes capturadas que se obtuvieron adosando una cámara fotográfica al instrumento.

RESULTADOS

DETERMINACIÓN DE LA CONCENTRACIÓN DE AGAR-AGAR A USAR EN LA MATRIZ DE AGAR QUE CONTIENE EL ANTIBIÓTICO EN EL MEDIO DE CULTIVO DE LARVAS DE DROSOPHILA MELANOGASTER

Con el fin de asegurar que la larva depositada sobre la superficie de agar ubicada sobre el alimento, pudiera llegar a alimentarse, luego de atravesar una película de agar-agar de 1 a 2 mm de espesor, que funciona como matriz para contener el antibiótico, se ensayaron diferentes concentraciones de agar-agar, antes de depositarla sobre el alimento. De acuerdo a la capacidad de las larvas de Drosophila melanogaster para excavar en las diferentes concentraciones ensayadas, el 100% de los individuos logró atravesar por completo el medio llegando a la base de la placa Petri después de una hora de ensayo (Fig. 1). La capacidad de excavación de larvas de estado II de Drosophila melanogaster fue comprobada cuando las larvas atravesaron por completo el medio hasta llegar al fondo de la placa Petri. En la preparación N° 1 (0,10 g en 100 mL de agua destilada), la ligera consistencia del gel (estado sol) permitía que la larva llegara con facilidad al fondo de la placa (Fig. 1a). Esta opción fue descartada porque la larva podría no tener suficiente contacto con el antibiótico. En la preparación N° 2 (0,40 g en 100 mL de agua destilada), la alta consistencia del medio semisólido impedía el desplazamiento necesario de la larva para llegar al fondo de la placa Petri, demoraba demasiado tiempo en alcanzar el fondo (Fig. 1b). Se descartó esta alternativa, la larva podría morir de inanición antes de llegar al alimento. La preparación N° 3 (0,20 g en 100 mL de agua destilada) tenía consistencia suficiente para que la larva consumiera el agar (matriz) horadando el medio en el tiempo adecuado (Fig. 1c) asegurando el consumo del antibiótico y del alimento.

PRUEBAS DE SUSCEPTIBILIDAD POR DIFUSIÓN EN AGAR DE LA MATRIZ DE AGAR QUE CONTIENE EL ANTIBIÓTICO

Los resultados de las pruebas de susceptibilidad por difusión en agar del antibiótico contenido en la matriz de agar sobre tres cepas bacterianas; E. coli K-12, E. coli SI y S. aureus 6538P, usando los discos de agar-agar con diferentes concentraciones de florfenicol, se muestran en la Tabla 1 donde se tabula el promedio del diámetro de los halos de inhibición de los discos de agar-agar/ florfenicol (triplicado), para cada una de las cepas ensayadas y se grafican los resultados como se puede observar en la Fig. 2, por lo tanto se comprueba reproducibilidad, el porcentaje del coeficiente de variación es menor al 10%, exceptuando dos mediciones. De las tres cepas analizadas, S. aureus 6538P es sensible a las concentraciones ensayadas (Fig. 2a) a diferencia de E. coli K-12 y E. coli SI (Fig. 2b-2c) donde no se observa proporcionalidad entre la concentración del antibiótico y los diámetros de los halos de inhibición en distintas concentraciones ensayadas. De esta forma se asegura que la concentración del antibiótico en el agar-agar sobre superficie de la mezcla del alimento en el frasco de cultivo esté disponible para ser ingerido por las larvas junto con el alimento.

FIGURA 1 Representación gráfica de las pruebas de susceptibilidad por difusión en agar (florfenicol) en tres cepas bacterianas. a) S. aureus 6538P. b) E. coli K-12. c) E. coli SI. / Graphical representation of test of susceptibility through agar diffusion (florfenicol) in three bacterial strains. a) S. aureus 6538P. b) E. coli K-12. c) E. coli SI. 

FIGURA 2 Capacidad de excavar de larvas de Drosophila melanogaster estadio II a distintas concentraciones de agar-agar. a) 0,10g/100mL. b) 0,40g/100mL. c) 0,20g/100mL. / Larval digging capacity of Drosophila melanogaster stage II at different concentrations of agar-agar. a) 0.10g/100mL. b) 0.40g/100mL. c) 0.20g/100mL. 

Las concentraciones de oxitetraciclina ensayadas no dieron halos de inhibición medibles, no obstante, se verificó que el antibiótico estaba presente. Las concentraciones ensayadas son demasiado altas para ser evaluadas mediante estas pruebas. No hubo crecimiento bacteriano alrededor de los discos depositados sobre las placas de ensayo de actividad bacteriana.

TOXICIDAD DE LOS ANTIBIÓTICOS EN LA GENERACIÓN PARENTAL

A igual concentración de antibiótico (0,3, 0,6 y 1,2 mg/mL), el florfenicol es más letal que oxitetracilina en el grupo parental de Drosophila melanogaster. En la concentración de 1,2 mg/mL de florfenicol, el porcentaje de mortalidad en los individuos adultos es de un 28% y a la misma concentración de oxitetraciclina es de un 17%, y a 0,3 mg/ mL de florfenicol es de 14% y para la misma concentración de oxitetraciclina es de 6%. En el grupo control, el valor promedio es de 5% (Fig. 3).

FIGURA 3 Porcentaje de mortalidad de individuos adultos en el grupo parental de D. melanogaster en concentraciones equivalentes de florfenicol y oxitetraciclina. / Percentage of mortality of adult individuals in the parental group of D. melanogaster in equivalent concentrations of florfenicol and oxytetracycline. 

Se ensayaron 3 concentraciones diferentes en oxitetraciclina (0,8, 1,6 y 3,2 mg/mL) y los resultados se resumen en la Fig. 4. El porcentaje de mortalidad en los parentales adultos aumentó significativamente al aumentar las concentraciones del antibiótico, alcanzando un máximo de 68%. El grupo control, al igual que en los tratamientos previos, no sobrepasó el 6% de mortalidad.

DOSIS EQUITOXICAS

Los resultados obtenidos del análisis Probit para oxitetraciclina muestran una concentración letal 50 % (CL50) de 2,6 mg/mL. (Fig. 5).

CICLOS DE VIDA EN LA GENERACIÓN PARENTAL

En la mayoría de los tratamientos antibióticos el ciclo de vida de Drosophila melanogaster fue modificado, y los insectos demoraron más tiempo en alcanzar el estado adulto. Al compararconel grupo control, al décimo día de tratamiento con una concentración de 1,2 mg/mL de florfenicol no se observó ningún adulto vivo. El día 13, un promedio de 17 individuos fueron contados en la concentración más alta, en tanto que en el grupo control en la misma fecha había 44 adultos. Este retraso en el desarrollo del ciclo vital del insecto se observa a concentraciones 0,3 mg/mL y 0,6 mg/mL. El número de mutantes en cada concentración de florfenicol se indica entre paréntesis en la Fig. 6. La concentración de 0,6 mg/mL tiene el mayor número de adultos alterados morfológicamente, con 4 individuos en total (Fig. 6).

El ritmo en los ciclos de vida de Drosophila melanogaster no se modificó en concentraciones de 0,3, 0,6, 0,8 y 1,2 mg/mL de oxitetraciclina, sin embargo, a concentraciones mayores a estas (1,6 y 3,2 mg/mL) hubo retraso significativo para alcanzar el estado adulto en Drosophila melanogaster (Fig.7).

FIGURA 4 Porcentaje de mortalidad de individuos adultos en el grupo parental de D. melanogaster en 3 concentraciones de oxitetraciclina. / Percentage of mortality of adult individuals in the parental group of D. melanogaster in 3 concentrations of oxytetracycline. 

FIGURA 5 Línea dosis-Probit (Ldp) para oxitetraciclina evaluados en el control de larvas D. melanogaster en laboratorio. / Line dose- Probit (Ldp) for oxytetracycline evaluated in the control of larvae D. melanogaster in laboratory. 

FIGURA 6 Número promedio de nacimientos por día (a partir del décimo dia) para las distintas concentraciones de florfenicol evaluadas en D. melanogaster. Entre paréntesis: número de mutantes observados. / Average number of births per day (from the tenth day) for the different concentrations of florfenicol evaluated in D. melanogaster. In parentheses: number of mutants observed. 

FIGURA 7 Número promedio de nacimientos por día (a partir del décimo día) para las distintas concentraciones de oxitetraciclina evaluadas en D. melanogaster. Entre paréntesis: número de mutantes observados. / Average number of births per day (from the tenth day) for different concentrations of oxytetracycline evaluated in D. melanogaster. In parentheses: number of mutants observed. 

NATALIDAD DE LA PRIMERA Y SEGUNDA GENERACIÓN FILIAL

En la primera generación, la tasa de natalidad no fue afectada por florfenicol, mientras que la segunda generación, la tasa de natalidad disminuye conforme aumenta la concentración del antibiótico, no superando los 200 individuos por tratamiento. Se indica en el gráfico (Fig. 8a) el número de individuos mutantes observados en cada concentración, donde la mayor cantidad se concentra en los 0,6 mg/mL, al igual que en el grupo parental (Fig. 8a).

En la primera como en la segunda generación filial, el tratamiento con oxitetraciclina, la tasa de natalidad disminuye conforme aumentan las concentraciones, alcanzándose un máximo de 280 individuos totales en la concentración más baja (0,8 mg/mL), comparados con 780 individuos contabilizados en el grupo control (Fig. 8b).

MORFOLOGÍA EXTERNA DE LARVAS E INDIVIDUOS ADULTOS AFECTADOS

Los antibióticos florfenicol y oxitetraciclina generaron cambios morfológicos significativos en larvas e individuos adultos. Las larvas del grupo control presentaron color blanco, segmentos definidos y región cefálica normal (Fig. 9a). Las larvas de los tratamientos con antibióticos manifestaron distensión total del cuerpo, disminución de volumen (Fig. 9b), oscurecimiento de cutícula, la cual se tornó de color beige en la parte anterior y café, en la porción media y posterior (Fig. 9c). Los adultos del grupo control presentaron ojos redondos y de color rojo; cuerpo normal, de color castaño oscuro; alas transparentes, ligeramente puntiagudas y que sobrepasaban la longitud del abdomen (Fig. 10a). Los adultos afectados en los tratamientos con

antibiótico mostraron daño morfológico, principalmente a nivel del ala, la que no alcanzaba a completarse (Fig. 10b, 10c, 10d) o bien no estaba presente en los individuos (Fig. 10e, 10f, 10g). Un número importante de organismos al final de cada tratamiento, era de tamaño más pequeño que los del grupo control. No se hicieron medidas de esta observación.

ANÁLISIS DEL SUSTRATO: PRUEBAS DE SUSCEPTIBILIDAD POR DIFUSIÓN EN AGAR POSTERIORES AL BIOENSAYO

Las pruebas de susceptibilidad por difusión en agar, realizados 30 días después de iniciados los tratamientos, indicaron presencia del antibiótico florfenicol en los medios de cultivo, dando positivo en la cepa E. coli SI, pero no en la cepa E. coli K-12, donde no hubo halos de inhibición en ninguna concentración ensayada (Fig. 11). El medio de cultivo en presencia de oxitetraciclina tenía una consistencia muy alterada y la concentración usada en los bioensayos era demasiado alta para medir halos de inhibición, sin embargo su actividad inhibitoria sobre las placas era evidente, no había crecimiento bacteriano, lo que evidenciaba la actividad del antibiótico, por lo que suponemos que la oxitetraciclina en el alimento se mantiene hasta al final de los 30 días. En general, esta prueba reveló que los antibióticos se mantienen y además, difunden desde la matriz de agar que lo contiene hacia el alimento.

FIGURA 8 Tasa de natalidad de la primera y segunda generación filial en concentraciones crecientes de a) florfenicol y b) oxitetraciclina en D. melanogaster. Números indican mutantes observados. / Birth rate of the first and second filial generation in increasing concentrations of a. florfenicol and b. oxytetracycline in D. melanogaster. Number means mutants observed. 

FIGURA 9 Larvas de Drosophila melanogaster. a) larva control. b-c) larvas sometidas a tratamiento. / Larvae of Drosophila melanogaster. a) larva control. b-c) larva subjected to treatment. 

FIGURA 10 Adultos de Drosophila melanogaster. a) adulto control. b-f) adultos sometidos a tratamiento. / Adults of Drosophila melanogaster. a) adult control. b-f) adults under treatment. 

FIGURA 11 Representación gráfica de pruebas de susceptibilidad por difusión en agar realizados 30 días después de iniciado el tratamiento con florfenicol, de la mezcla del alimento en el frasco de cultivo de las larvas, usando la cepa bacteriana E. coli SI. / Graphic representation of test of susceptibility through agar diffusion, performed 30 days after the beginning of florfenicol treatment, of the food mixture in the larval culture flask, using the bacterial strain E. coli SI. 

ASPECTO GENERAL DE FRASCOS Y MEDIO DE CULTIVO AL FINAL DEL EXPERIMENTO

Los frascos de cultivo de los tratamientos con florfenicol y oxitetraciclina, presentaron variaciones de pH y coloración durante el estudio. El grupo control presentó sustratos de color amarillo oscuro, levemente humectado al cabo de 7 días y cuyo pH oscilaba entre los 6,0-6,5. Los tratamientos, en cambio, presentaron un sustrato cuya coloración variaba del café claro (Fig. 12a) al café oscuro (Fig. 12b), dependiendo de la concentración de antibiótico en el medio; superficie seca y un pH que oscilaba entre 6,5-8,0 (también dependiente de la concentración de antibiótico en el medio). Las pupas del grupo control se encontraban distribuidas por todo el frasco de vidrio, alejadas del alimento y en un número alto de individuos. Las pupas de los tratamientos, se distribuían sobre el alimento y unas pocas entraban en contacto con el vidrio del frasco, además el número de ejemplares era considerablemente menor que las observadas en el grupo control (Fig. 13).

FIGURA 12 Comparación entre el control y los tratamientos con oxitetraciclina de medios de cultivo en Drosophila melanogaster. a) 1,6 mg/mL. b) 3,2 mg/mL. / Comparison between control and oxytetracycline treatments of culture media in Drosophila melanogaster. a) 1.6 mg/mL. b) 3.2 mg/mL. 

DISCUSIÓN

FIGURA 13 Comparación entre tratamientos (izquierda) el grupo control (derecha) del número de pupas de Drosophila melanogaster y su ubicación en los frascos en tratamientos con oxitetraciclina (3,2 mg/mL). / Comparison between treatments (left) the control group (right) of the number of pupae of Drosophila melanogaster and their location in the bottles in treatments with oxytetracycline (3.2 mg/mL). 

La mayor parte de los bioensayos estandarizados, evalúa el efecto antibiótico en corto plazo, en una sola generación, calculando el índice de mortalidad o inhibición del crecimiento de la población en un tiempo definido (72 ó 96 h). Esta investigación, informa sobre el efecto en la descendencia (en dos generaciones sucesivas) donde parentales y descendencia fueron sometidos a la acción de antibióticos en la etapa larval, específicamente estado larva II de la cepa silvestre “santiago” de Drosophila melanogaster. Estudios anteriores realizados con Daphnia magna informaron de efectos trans-generacionales sobre los individuos y las poblaciones de esta especie sometida a la acción de tetraciclinas, en cuatro generaciones sucesivas (Kim et al. 2017, 2014), atribuyendo este efecto trans- generacional a la redistribución del gasto metabólico (Kim et al. 2012).

Los antibióticos embebidos en una matriz de agar al ser aplicados sobre el alimento de larvas de Drosophila melanogaster, en ensayos separados, mostraron distinta actividad biológica y difunden hacia el alimento subyacente probablemente producto del movimiento constante de las larvas. La alimentación de larvas de Drosophila melanogaster con antibióticos, indicó que a igual concentración florfenicol es más letal en la generación parental (28% de mortalidad) que oxitetraciclina (18% de mortalidad) (Fig. 3). Dada la similitud en la estructura química del florfenicol con hormona juvenil, que mantiene el estado larval en el ciclo de vida e interactúa con ecdisonas para cambiar el equilibrio balanceado entre ambas hormonas y producir la metamorfosis (Pastor et al. 2006). Se puede atribuir al florfenicol un efecto disruptor endocrino afectando la progresión del ciclo vital, con mudas tardías o adultos que no emergen de la pupa (Ren et al. 2016; Jindra et al. 2015, 2013; DeFur 2004; Riddiford, & Ashburner 1991; Viñuela et al. 1991). La exposición a concentraciones excesivas de hormona juvenil en la etapa larval evita la metamorfosis, no diferenciándose las estructuras del adulto. La eclosión del adulto no necesita hormona juvenil (Riddiford & Ashburner 1991). En la descendencia de los adultos tratados en la etapa larval con florfenicol también hay un efecto de retardo del ciclo de vida del insecto, en generaciones sucesivas, proporcional a la concentración ensayada del antibiótico sobre las larvas de los parentales (Fig. 6 y Fig. 7). No se observa cambio en el ritmo del ciclo de vida del insecto en la descendencia en las mismas concentraciones de oxitetraciclina en los parentales de la primera generación.

Se estimó la CL50 para florfenicol con un valor de 2,6 mg/mL en la línea dosis-Probit (Fig. 5). A una concentración de 3,2 mg/mL la mortalidad de Drosophila melanogaster es de un 68%. El florfenicol afecta a nivel de la síntesis de proteínas a organelos de origen procariótico de la célula eucariótica (mitocondria y cloroplasto). Causa alteraciones estructurales graves, disfunción de mitocondrias, y como consecuencia, inhibe la proliferación celular por acumulación de daños en mitocondrias, causa un aumento de la senescencia celular en cultivos de fibroblastos de ratón (Hu et al. 2017). El efecto tóxico de florfenicol sobre el cloroplasto, produce inhibición del crecimiento de cultivos de microalgas (Chlorella pyrenoidosa, Isochrysis galbana y Tetraselmis chui) (Wang et al. 2015; Du & Liu 2012; Lai et al. 2009), inhibiendo la fotosíntesis en Skeletonema costatum, a una concentración mayor o igual a 1 mg/L en 6 h (Liu et al. 2012).

Para el bioensayo con oxitetraciclina en Drosophila melanogaster, se estimó un valor de CL50 (2,6 mg/mL). En este trabajo fue ensayado el valor equivalente a la concentración de antibiótico recomendado para peces y utilizado en salmonicultura en nuestro país. Este valor es mil veces superior al informado en la literatura para otras especies. Por ejemplo, Lützøft et al. (1999) encontraron que a las 72 h la CL50 de oxitetraciclina era de 1,6 mg/L para el alga de agua dulce Raphidocelis subcapitata y de 4,5 mg/L para el alga Rhodomonas salina. A su vez, Ferrreira et al. (2007), informaron que la CL50 determinada para la microalga Tetraselmis chuii fue de 11,18 mg/L. Estas diferencias también podrían ser atribuidas a la matriz que contiene al antibiótico (agua dulce versus matriz de agar en este estudio) que pudiera afectar la disponibilidad o la biodisponibilidad del antibiótico. Al comparar con el crustáceo Artemia parthenogenetica (3 mm de longitud (similar al tamaño de Drosophila melanogaster), el valor de CL50 asciende a 870,47 mg/L (Ferreira et al. 2007), por lo que es probable que los artrópodos sean más resistentes a la acción de los antibióticos que las microalgas y se necesita mayor concentración de los antibióticos para producir un efecto medible en artrópodos.

Nuestros resultados evidencian un daño morfológico y del ciclo de vida en Drosophila melanogaster. La oxitetraciclina produce mortalidad superior al 65% en el grupo parental, y en las generaciones sucesivas, menor natalidad, en directa relación con las concentraciones aplicadas. El número de mutantes observados es mayor en los tratamientos con oxitetraciclina que en aquellos donde se utilizó florfenicol. A igual concentración, el antibiótico florfenicol es más letal que oxitetraciclina, en el grupo parental de Drosophila melanogaster. En experimentos de exposición multigeneracional de Dafnia magna en 4 generaciones, a tetraciclinas, aplicados por 21 días en cada generación han demostrado que hay efectos negativos sobre la reproducción en todas las generaciones y aumentado en las sucesivas generaciones, disminuyendo la tasa de crecimiento intrínseca de la población atribuyéndose al gasto energético metabólico en detrimento de la reproducción (Kim et al. 2014, 2012).

La tasa de natalidad en la primera y segunda generación filial disminuye, en comparación con el grupo control, en tres generaciones sucesivas de Drosophila melanogaster. A mayor concentración del antibiótico usada sobre la generación parental y sobre las generaciones sucesivas, mayor es el efecto en las generaciones sucesivas. Esto se manifiesta en una disminución de descendientes o aparición de un mayor número de individuos con moscas adultas que presentan deformaciones del ala, en bajo porcentaje, lo que implicaría posibilidad de daño del material genético heredable inducido antibióticos ingeridos en la etapa larvaria. Estos antibióticos afectarían directamente a los discos imaginales del ala que están presentes en la larva (Wolpert et al. 2007). Los cambios morfológicos del insecto atribuibles a la acción de los antibióticos ensayados se expresa en el ala, que en algunos casos estaba ausente o incompleta (Fig. 10b-g), implicaría que en el estado II de la larva, el antibiótico actuaría sobre las células de los discos imaginales del ala, antes que el disco imaginal se haga competente para metamorfosear al final del estadio II de la larva (Riddiford & Ashburner 1991). La disminución del número de individuos de una generación a otra también puede ser atribuido al comportamiento del macho durante el cortejo, que incluye una serie de actos ejecutados en el vuelo, antes de copular (Siegel & Hall 1979; Spieth 1974). O’Shea & Singh (2015) demostraron que la tetraciclina afecta la aptitud reproductiva de Drosophila melanogaster y la proporción sexual de la descendencia de machos y hembras tratados separadamente con el antibiótico. Los machos tratados con el antibiótico, cruzados con hembras no tratadas producen exceso de machos en la descendencia y reducción de la aptitud reproductiva del macho, lo que se manifiesta en una condición de movilidad espermática reducida en padres y heredada por sus hijos en Drosophila melanogaster (Zeh et al. 2012; Yang & Lu 2011) también demostrada en vertebrados, incluyendo al hombre (Elzeinova et al. 2013; Hargreaves et al. 1998). Efectos multigeneracionales de oxitetraciclina sobre Daphnia magna demostraron que induce diferentes respuestas transcripcionales dependientes de las dosis aplicadas y la generación considerada lo que afecta al metabolismo (Kim et al. 2017).

En concordancia con lo anterior, Botelho et al. (2015) demostraron efectos negativos de florfenicol y oxitetraciclina sobre juveniles del pez Oreochromis niloticus, usando el ensayo del cometa se demostró daño en el ADN de los eritrocitos del pez, y además, un alto porcentaje de deformidades citológicas evidenciando efecto sobre el material genético presentando núcleo con escotadura, lobulado y fragmentado. No ha sido explicada a nivel molecular la toxicidad de florfenicol sobre el material genético. La genotoxicidad de la oxitetraciclina se debe a la fuerte afinidad de tetraciclinas al ADN, formando complejos binarios que alteran la estructura secundaria del ADN nativo (Khan & Musarrat 2003). Ballard & Melvin (2007) comprobaron efecto de tetraciclinas en el metabolismo mitocondrial en dos generaciones de Drosophila melanogaster. Oliveira et al. (2013) demostraron que concentraciones de exposición sobre 50 mg/L de oxitetraciclina causa disminución de laactividadantioxidante de la catalasa del pez adulto Danio rerio y aumento de la actividad de la glutathion S-transferasa muscular y hepática en concentraciones superiores a 10 mg/L. Efectos adversos de tetraciclinas a células eucariontes incluyen una marcada reducción y retraso del crecimiento, reducción del consumo de oxígeno, reducción en la fecundidad en varias especies, incluyendo a Drosophila melanogaster (Moullan et al. 2015; Zeh, et al. 2012; Çelik & Eke 2011).

Kołodziejska et al. (2013) investigó la toxicidad de florfenicol y oxitetraciclina en una microalga (Scenedesmus vacuolatus), en la planta acuática, “lenteja de agua” (Lemna minor) y un crustaceo (Daphnia magna), demostrando un efecto notable de cada antibiótico, sobre la lenteja de agua como lo evidencia el valor de las concentraciones de exposición a florfenicol (EC50 = 3.26 mg/L) y a oxitetraciclina (EC50 =2.96 mg/L), y sobre la microalga, con EC50 = 40.4 mg/L para florfenicol y EC50 =18.0 mg/L, para oxitetracilina.

En acuicultura el 70-80% de los antimicrobianos se distribuye por corrientes marinas y remolinos o por movimientos del agua causados por la biota marina (Monteiro et al. 2016). Oxitetraciclina puede permanecer biológicamente activa en los sedimentos durante meses e inclusive años (Coyne et al. 1997; Capone et al. 1996). La vida media de este compuesto en la capa superior de los sedimentos marinos (0-1 cm), es de 151 días, a profundidades de 5-7 cm, la vida media se extiende a 300 días (Hektoen et al. 1995). Las pruebas de susceptibilidad por difusión en agar del antibiótico contenido en la matriz de agar realizados 30 días después de iniciado los tratamientos indican presencia de florfenicol en el sustrato usado por la mosca para alimentarse (Fig. 11), mostrando la misma potencia inhibitoria. Este mismo análisis no pudo ser medido en el medio de cultivo con oxitetraciclina. En nuestro experimento, el medio de cultivo con oxitetraciclina se oscureció a tonos marrones por fotodegradación (Pouliquen et al. 2007), también observado por otros autores tras 24 h de exposición de este antibiótico en agua, cuyos productos presentarían actividad antibiótica (Botelho et al. 2015; Ferreira et al. 2007).

El florfenicol, tiene alta afinidad por sustancias hidrofóbicas (lípidos y grasas) a diferencia de oxitetraciclina, que es hidrosoluble (Hektoen et al. 1995) y menos persistente en el medio acuático (Elema et al. 1996). Por lo tanto, la acumulación de materia orgánica bajo las jaulas de salmones, podría retener antibióticos, dependiendo de la granulometría del fondo y contenido de arcillas, lo que es un grave factor de riesgo para la natural bentónica. En sedimentos marinos la permanencia del florfenicol es breve, porque la microflora presente en el fondo lo degrada (Hektoen et al. 1995) pero en ambientes donde constantemente se están liberando antibióticos al medio, la microbiota se reduce, aumentando la persistencia del antibiótico, como se observó en el medio estéril de cultivo de larvas de Drosophila melanogaster en este trabajo. En el tiempo de vida medio equivalente a 4-5 días, se puede transformar a un derivado florfenicol amina, más persistente (Hektoen et al. 1995) o permanecer asociado a la materia orgánica del sedimento del fondo marino (Yu et al. 2011). El tiempo de vida media del florfenicol en el tramo entre 0 a 1 cm es de 1,7 días, en tanto, a 5-7 cm de profundidad es de 7,3 días (Hektoen et al. 1995).

Con la información obtenida de este estudio es necesario con fines de conservación del entorno inmediato de las salmonicultura, se recomienda evaluar el efecto específico de estos antibióticos, usando organismos propios de la fauna natural que circunda alrededor de los centros de cultivo de salmón, analizando ciclos de vida y mortalidad en los individuos, donde se incluya un número consistente de generaciones, que permitan comprender el efecto de estos y otros antibióticos en el tiempo.

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Recibido: 02 de Enero de 2018; Aprobado: 13 de Septiembre de 2018

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