INTRODUCCIÓN

En la actualidad existen biomateriales, biocerámicos y cementos, los cuales son de gran utilidad en odontología, principalmente cuando se usan en el ligamento periodontal y el hueso alveolar, fracturas, perforaciones u obturaciones retrógradas (^{Broon et al., 2016}), los componentes principales de estos biomateriales son a base de calcio (Ca); fosfato monobásico, silicatos de calcio, hidróxido de calcio, óxido de zirconio y agentes de relleno y espesantes (^{De-Deus et al., 2009}; Broon et al.). Cuyos objetivos principales son mantener en posición la restauración y evitar la filtración bacteriana y la microfiltración entre el cemento y el diente de agentes externos (^{Costa et al., 2000}; ^{Dickens et al., 2010}).

El TheraCal TM LC, es un cemento silicato de calcio modificado con resina (SMCR), fotocurable o fotopolimerizable, perteneciente a los MTA (Agregado de Mineral Trióxido), su función principal es formar una barrera protectora del complejo dentino- pulpar. Su formulación consta de 45 % de partículas de silicato tricálcico (cemento Portland tipo III), 10 % de estroncio que lo provee de radiopacidad, 5 % de sílica pirogénica que le otorga características hidrofílicas y 45 % de contenido de resina, así como un pH alcalino. Por su contenido de Ca en los biomateriales generan un aumento de biodisponibilidad de esté, estimulando la formación del puente dentario atreves de las células involucradas en la formación de tejidos mineralizados, promoviendo la diferenciación de fibroblastos en odontoblastos y aumentando la actividad de la enzima pirofostasa responsable en la mineralización de la dentina (^{Cintra et al., 2010}; ^{Gandolfi et al., 2012}; ^{Cedillo Valencia & Cedillo Félix, 2013}). Sin embargo, a pesar de que los biomateriales mantienen un nivel de biocompatibilidad aceptable por las características de sus componentes, se busca la posible respuesta biológica y los efectos adversos de los materiales de uso odontológico desde la toxicidad, inflamación, alergia y mutabilidad (^{Rojas, 1995}; ^{Villegas et al., 2008}).

Las pruebas de biocompatibilidad son pruebas iniciales como ensayos de citotoxicidad, respuesta inflamatoria y carcinogénesis, además las pruebas secundarias permiten medir los niveles de reacciones inflamatorias o de respuestas inmunitarias frente al material (Rojas; ^{Berrios Quina & Porto Neto, 2004}; Villegas et al.). Diversos estudios realizados en dentición de animales, implantes subcutáneos y cultivos celulares, han sido utilizados para la evaluación sobre la biocompatibilidad de materiales usados en odontología (Cintra et al.). La prueba más utilizada es la implantación a través del tejido subcutáneo en ratas, el cual se emplea para evaluar diversos materiales dentales de uso en terapia pulpar u obturación radicular (Villegas et al.). Sin embargo, existen pocos reportes científicos que reporten el uso específico del TheraCal TM LC y su biocompatibilidad con el tejido subdérmico y el organismo.

El presente tiene como objetivo determinar la respuesta inflamatoria en ratas Wistar implantadas son TheraCal TM LC en tubos de polietileno en tejido subdérmico.

MATERIAL Y MÉTODO

Se diseñó un estudio experimental, comparativo, prospectivo longitudinal en un modelo animal (rata Wistar), se realizó en el Bioterio de la Facultad de Medicina, Unidad Torreón, Universidad Autónoma de Coahuila, Coahuila, México. Apegándose a la Norma Oficial Mexicana (NOM062-ZOO- 1999), además la investigación fue aprobada por el comité de Bioética de la Facultad (No. CONBIETICA07CEI00320131015).

Modelos animales. Se utilizaron seis ratas Wistar entre machos y hembras con un rango de peso de 200 a 300 g, a todos los modelos animales se les mantenía limpieza constante, bajo condiciones de temperatura controlada de 25-26 °C, con humedad relativa de 30-70 % y con ciclos de luz y oscuridad de 12 h. Todos los animales fueron alimentados con croquetas para ratas (HARLAN®) y agua ad libitum.

El estudio fue realizado en el bioterio certificado por la Secretaría de Agricultura, Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación (SAGARPA) y Servicio Nacional de Sanidad, Inocuidad y Calidad Agroalimentaria (SENASICA) de la Facultad de Medicina de la Universidad autónoma de Coahuila Unidad Torreón, México; con número de certificación: AUT-B-C-0318-42. Todos los procedimientos fueron supervisados por un veterinario certificado por SAGARPA y SENASICA (No. 4807528).

Procedimiento. Para la implantación del tubo polietileno y del TheraCal TM LC (Bisco Inc., Schaumburg, IL, USA), los animales fueron anestesiados con clorhidrato de ketamina 500 mg/10 mL y diazepam 2 mg/1 mL en dosificación de 2 mL/100 g y se permitió un tiempo de anestesia de aproximadamente 20 min. El dorso fue marcado en cuatro cuadrantes y se rasuraron hasta dejar la epidermis libre de pelaje y fue desinfectada con iodo en alcohol al 5 %. Bajo condiciones asépticas se realizaron tres incisiones de aproximadamente 12 mm de largo por 20 mm de profundidad realizada mediante una tijera de punta roma permitiendo abrir el tejido subcutáneo de manera lateral para obtener dos ventanas quirúrgicas una a cada lado de la incisión sin que se producción de hemorragia, además, se realizaron dos incisiones con cuatro bolsillos quirúrgicos para los materiales.

Implantación de los materiales. Cuadrante uno; se implantó un tubo de polietileno de 5 mm de longitud por 1,3 mm de diámetro relleno de TheraCal TM LC.Cuadrante dos; tubo de polietileno de 5 mm de longitud por 1,3 mm de diámetro Cuadrante tres; se colocó 8 mm de TheraCal TM LC en el tejido directamente. Cuadrante cuatro; Considerado control.

La colocación de los tubos se realizó con una pinza curva y en un sentido paralelo a la incisión y con el extremo abierto en dirección cefálica quedando en contacto con tejido conjuntivo. Posteriormente se fotopolimerizó TheraCal TM LC de los cuadrantes uno y tres con una lámpara de fotopolimerización a 6 mm de distancia por 20 segundos. Después de la implantación las incisiones fueron suturadas con Vicril de 3 ceros y se limpiaron las zonas de incisión. Después de 7, 15 y 30 días posteriores a la implantación, se obtuvieron biopsias excisionales de cada cuadrante y se fijaron con formol al 10 %, las cuales fueron procesadas para su evaluación histopatológica.

Evaluación histopatológica. Se realizo la técnica histopatológica convencional de inclusión en parafina y se realizaron cortes histológicos de 5 a 7 micras y se tiñeron con hematoxilina eosina (H&E) y Azul de Toluidina (AT) pH 2,3. los cortes histopatológicos que fueron teñidos con H&E fueron observados en un microscopio de luz de campo claro a 100X, evaluando ocho campos, en los cuales se realizó un conteo de células polimorfonucleares, neutrófilos, macrófagos, linfocitos y células plasmáticas por campo. Los cortes teñidos con AT pH 2,3 se observaron con el microscopio de campo claro a 100X, evaluando ocho campos en los cuales se realizó un conteo de células cebadas.

Análisis estadístico. Todos los resultados muestran media y desviación estándar siguiendo las caracterices de las variables fueron analizadas mediante la prueba estadística de t de Student considerando estadísticamente significativos valores de p<0,05. El paquete estadístico SPSS versión 21 fue utilizado para este análisis.

RESULTADOS

En la evaluación de la respuesta inflamatoria en los tres cuadrantes tratados se observó en la evaluación del séptimo día un incremento significativo en el conteo de células polimorfonucleares, linfocitos, macrófagos y células plasmáticas todos respecto al cuadrante control. La evaluación del decimoquinto día no existió diferencia de en las líneas celulares evaluadas. En la evaluación del día 30 se mostró un incremento en el número de polimorfonucleares, linfocitos, macrófagos, células plasmáticas y células cebadas (Tabla I). En el cuadrante control se observó la dermis y tejido subcutáneo de características histológicas normales con presencia de escaso infiltrado inflamatorio. Las observaciones a 40X con la tinción H&E muestran la diferencia del infiltrado inflamatorio en los diferentes cuadrantes con respecto a lo observado en los controles a los 7, 15 y 30 días respectivamente (Fig. 1).

Tabla I Conteo histológico de tejido subdérmico con las tinciones de H&E y de AT pH 2.3 a los 7, 15 y 30 días posteriores a la implantación. 

*p<0.05 Estadísticamente significativo con respecto al grupo control.

Fig. 1 Tinción con H&E. Diferencia del infiltrado inflamatorio en los cuadrantes vs los controles en los 7, 15 y 30 días respectivamente. 

DISCUSIÓN

La aparición del infiltrado inflamatorio observado a los 7 días de nuestro estudio experimental concuerda con lo reportado por ^{Souza et al. (2006}) quienes demostraron que posterior al implante de liners de ionómeros de vidrio se presentaba una respuesta inflamatoria moderada observando neutrófilos, macrófagos y linfocitos. Otro estudio utilizando tubos de polietileno con MTA por Cintra et al. en huecos alveolares de ratas y también en bolsillos quirúrgicos de tejido conectivo subepitelial, reportó pocas células inflamatorias a los 30 días de exposición, a diferencia de lo observado en nuestro estudio, en donde a los 30 días el infiltrado inflamatorio aun persistía, con predominio linfocítico y de macrófagos. Aunque el incremento de los distintos tipos celulares se presentó en todos los cuadrantes a los 7 días, el observado para el cuadrante implantado únicamente con TheraCal TM LC (linfocitos 13,94±0,80, macrófagos 4,38±1,41 y células plasmáticas 1,75±0,18 ), fue considerablemente menor al observado en el grupo con implante que contuvo el TheraCal TM LC en tubos de polietileno y el grupo implantado con el tubo polimerizado, los cuales presentaron valores en tipos celulares de células polimorfonucleares 1,06±0,27, linfocitos 18,19±2,56, macrófagos 7,3±0,27 y células plasmáticas 3,19±1,15 y, células polimorfonucleares 1.88±0.71, linfocitos 21,06±8,75, macrófagos (7,94±2,56) y células plasmáticas 2,81±0,27 respectivamente.

En nuestro estudio observamos un predominio de polimorfonucleares a los 7 días y, de linfocitos y macrófagos a los 30 días, lo que concuerda con lo reportado en la literatura por ^{Kumar et al. (2003}) quienes describieron que en el infiltrado agudo se promueve el cambio vascular y el cambio en el flujo sanguíneo y posteriormente, se presentan los cambios celulares con predominio de neutrófilos con el objetivo de fagocitar el agente agresor y, por su parte, el infiltrado crónico (por semanas, meses o años) con predominio de linfocitos y macrófagos, se activa debido a que el proceso agudo no es capaz de eliminar el agente agresor o bien, se ve impedido el proceso de respiración celular por diversos agentes, siendo probablemente en nuestro trabajo, debido al tubo de polietileno. Por otro lado, las células cebadas no mostraron incremento significativo en la mayoría de los grupos de estudio, lo que difiere con lo reportado por ^{Campos Quintana et al. (2003}) quien describió un incremento en este tipo celular a los 15, 30 y 45 días de exposición a Cemento Portland con tubo polimerizados, atribuyéndole a este hallazgo una reacción alérgica al plástico.

En este estudio se describe por primera vez la presencia de infiltrado inflamatorio ocasionado por el implante de TheraCal TM LC vía subcutánea en ratas Wistar, siendo éste similar al descrito para otros compuestos relacionados al TheraCal TM LC de uso odontológico (Campos Quintana et al.; ^{Hebling et al., 2009}; Cintra et al.). Además, el presente se distingue por arrojar datos cuantitativos de tipos celulares y no solo cualitativos o descriptivos como en la mayoría de los artículos relacionados.

En nuestro estudio observamos una reacción inflamatoria en todos los grupos experimentales, sin embargo, la tendencia es mayor en los grupos con injerto de tubo polimerizado y TheraCal TM LC en el tubo polietileno, por lo que podemos concluir que la aplicación únicamente del tubo es suficiente para producir una reacción inflamatoria más acentuada que al injertar directamente el TheraCal TM LC. A los 30 días de nuestro estudio, aún se observa una respuesta inflamatoria con el uso del TheraCal TM LC lo que concuerda con otros estudios relacionados (Campos Quintana et al.; Cintra et al.), donde también determinaron que, al mismo tiempo de exposición, la respuesta es escasa.

En conclusión, el área con implantación del tubo polietileno y el tubo polietileno con TheraCal TM LC presentan mayor respuesta inflamatoria que el TheraCal TM LC aplicado de manera directa. No se observaron efectos adversos en áreas distantes al sitio de implante, por lo que deducimos que el TheraCal TM LC no tiene efectos nocivos a distancia. Nuestros resultados en conjunto con los de otros estudios, parecen indicar que este material es útil en el tratamiento de complicaciones odontológicas; sin embargo, consideramos necesario realizar la evaluación del TheraCal TM LC en pacientes para confirmar lo anterior.