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Latin american journal of aquatic research

versión On-line ISSN 0718-560X

Lat. Am. J. Aquat. Res. v.38 n.2 Valparaíso  2010

http://dx.doi.org/10.4067/S0718-560X2010000200008 

Lat. Am. J. Aquat. Res., 38(2): 234-241, 2010
DOI: 10.3856/vol38-issue2-fülltext-8

Research Article

 

Inducción del desove y espermiación de anchoveta peruana Engraulis ringens (Jennyns, 1842) en cautiverio mediante la inyección de un análogo de GnRH

Induction of spawning and spermiation in captive Peruvian anchovy Engraulis ringens (Jennyns) using GnRH analogue injection

 

Carlos Espinoza1, Ángel Perea2, Betsy Buitrón2, Paola Cisneros1, Christian Catcoparco1, Andrés Alberro3 & Denise Vizziano3

1    Laboratorio de Biología Experimental, Instituto del Mar del Perú Esquina Gamarra y Valle s/n, Chucuito, Callao, Perú
2    Laboratorio de Biología Reproductiva, Instituto del Mar del Perú Esquina Gamarra y Valle s/n, Chucuito, Callao, Perú
3    Laboratorio de Fisiología de la Reproducción y Ecología de Peces, Facultad de Ciencias Universidad La República, Iguá 4225, Montevideo 11400, Uruguay

Dirección para correspondencia


RESUMEN. Con la finalidad de obtener desoves de ejemplares de Engraulis ringens en cautiverio para realizar pruebas experimentales con huevos y larvas; el presente trabajo evaluó el efecto de inyecciones de acetato de buserelina (un análogo de GnRH; GnRHa) sobre desove y espermiación. Además, se utilizó domperidona (DOM) para eliminar un posible control dopaminérgico en la liberación de gonadotropinas endógenas en esta especie. Se inyectaron intraperitonealmente ejemplares maduros con 0,005 ug GnRHa g-1 pez (GnRHa); 0,005 ug GnRHa g-1 pez + 0,01 mg DOM g-1 pez (GnRHa+DOM) o solución salina a 0,9% (SS). Hubo un efecto inductor de los tratamientos con GnRHa y GnRHa+DOM sobre el desove. Los desoves ocurrieron entre 24 y 48 h post-inyección (p.i.) y los porcentajes totales fueron 57,3% y 20,9%) con GnRHa y GnRHa+DOM respectivamente, los cuales fueron significativamente diferentes (P < 0,05). El efecto de la hormona sobre la expulsión de semen fue inmediato en el tratamiento con GnRHa (44,4%>), siendo el porcentaje de machos expulsantes a 0 horas p.i. significativamente diferente al control (0 %>) (P < 0,05). El máximo porcentaje de machos expulsantes se observó a las 12 horas p.i., siendo 85,7%> con GnRHa y 75,0%> con GnRHa+DOM, entre los cuales no se encontró diferencias significativas (P > 0,05). De acuerdo a los resultados obtenidos no existiría un control dopaminérgico en esta especie, ya que hubo expulsión de gametos con o sin la aplicación de domperidona. Por el contrario, se observó significativa reducción de los porcentajes de peces expulsantes al inyectar DOM.

Palabras clave: antidopaminergico, esteroides, GnRHa, desove, espermiación, Engraulis ringens, Perú.


ABSTRACT. In order to achieve spawning in captive Engraulis ringens that would result in eggs and larvae for experimental assays, the present work evaluated the effect of buserelin acétate (an analogue of GnRH; GnRHa) injections on spawning and spermiation. Domperidone (DOM) was also used in order to reject a possible dopaminergic control in the reléase of endogenous gonadotropins for this species. Ripe fish were mjected mtraperitoneally with 0.005 ug GnRHa g-1 fish (H), 0.005 ug GnRHa g-1 fish + 0.01 mg DOM g-1 fish (HD) or saline solution at 0.9%> (SS). The GnRHa and GnRHa+DOM treatments showed an inductor effect on spawning, which occurred between 24 and 48 h post injection (p.i.). The results were significantly different (P < 0.05), with total percentages of 57.3% (GnRHa) and 20.9% (GnRHa+DOM). The effect of the hormone on spermiation was immediate, with the GnRHa (44.4%>) treatment, and percentages of spermiated males at 0 hours p.i. differed significantly from the control (P < 0.05). Spermiation was highest 12 hours p.i., with valúes of 85.7% (GnRHa) and 75.0% (GnRHa+DOM). These valúes did not differ significantly (P > 0.05). Our results indicate the absence of a dopaminergic control in this species, since gametes were expelled with or without domperidone. On the contrary, the percentages of spawned and spermiated fish after being injected with DOM were significantly lower.

Keywords: antidopaminergic, steroids, GnRHa, spawning, spermiation, Engraulis ringens, Peru.


INTRODUCCIÓN

Uno de los métodos utilizados para acelerar la maduración gonadal e inducir el desove de peces en cautiverio es la manipulación de factores ambientales como temperatura y fotoperiodo (Blancas-Arroyo et al., 2004; Biswas et al., 2005); para lo cual es indispensable la adaptabilidad de los peces a su nuevo ambiente. Por ello, métodos que utilizan la administración de hormonas exógenas son utilizados eficazmente cuando no se logran los desoves espontáneos, tal es el caso de extractos de hipófisis (Leong, 1971; Adebayo & Fagbenro, 2004) y gonadotropinas (Gn) hipofisiarias o placentarias (Cacót et al., 2002).

Actualmente, la tendencia más utilizada es la administración de hormonas liberadoras de gonadotropinas (GnRH) y sus análogos potenciados (Marino et al., 2003; Mylonas et al., 2004; Vermeirssen et al., 2004; Arabaci et al., 2004a; Levavi-Sivan et al., 2004; Dorafshan & Heyrati, 2006; Ronyai, 2007), ya que actúan al más alto nivel del eje hipotálamo-pituitaria-gónada, promoviendo un adecuado balance de la cascada hormonal reproductiva y desencadenando el desove y espermiación (Zohar & Mylonas, 2001).

Sin embargo, el uso de GnRHs puso en evidencia que en algunas especies la secreción de Gn está regulada por un control dual hipotalámico de GnRH y dopamina, los cuales actúan como inductor e inhibidor respectivamente (Peter & Yu, 1997). Portal motivo, la reproducción artificial de estas especies con GnRHs, requiere el uso de antidopaminérgicos que permitan el correcto funcionamiento de la hormona inyectada (Brzuska & Adamek, 1999; Sukumasavin et al., 2000).

Las técnicas de reproducción de peces en cautiverio no sólo tienen importancia acuícola, sino también pesquera, a fin de permitir un abastecimiento de huevos, embriones y larvas para realizar estudios experimentales que aporten datos a modelos pesqueros o ecológicos (Peñailillo & Araya, 1996; Olivar et al., 2000; Garrido et al., 2007). En este contexto, es que se realizan experimentos en laboratorio con ejemplares de anchoveta peruana mantenidos en cautiverio, para comprender procesos de su biología que no pueden ser dilucidados con datos de pesquerías (Espinoza et al., 2009).

A pesar de haberse establecido las bases del mantenimiento en cautiverio de ejemplares silvestres de Engraulis ringens (Espinoza et al., 2008), su reproducción espontánea en tanques de cría no ha sido posible. Las hembras alcanzan su madurez gonadal pero son incapaces de desovar espontáneamente, mientras que bajos porcentajes de machos expulsan el semen tempranamente ante la presencia de hembras vitelogenadas (Espinoza et al., 2009). Pruebas preliminares de inducción del desove utilizando gonadotropina coriónica humana (HCG) dieron resultados poco alentadores en nuestro laboratorio (datos no publicados). Por lo tanto, en el presente trabajo se evalúa el efecto de la inyección de acetato de buserelina (un análogo de GnRH) para el mismo fin y el objetivo de reproducir a esta especie en cautiverio. Junto con GnRHa se utilizó domperidona (DOM) para inhibir un posible control dopaminérgico en la liberación de gonadotropina endógena de los peces tratados; pues como se conoce, la inhibición de la acción de GnRHs por parte de la dopamina, es determinante en algunas especies (Richard et al., 1988; Alok et al., 1997; Firat et al., 2005; Heyrati et al., 2007).

MATERIALES Y MÉTODOS

Ejemplares adultos de anchoveta peruana fueron capturados en la Bahía del Callao, Perú; utilizando un sistema de red izada y luces de atracción según metodología descrita por Espinoza et al. (2008). El acondicionamiento al cautiverio de los peces capturados, se realizó durante 30 días en tanques cilindricos de fibra de vidrio de 10 m de capacidad conectados a un sistema de recirculación de agua, a temperatura constante de 16°C, fotoperiodo de 10L-140, y alimentando con Larval AP100® (4,53 Kcal g-1) y alimento extraído Nicovita (4,61 Kcal g-1) según metodología descrita por Espinoza et al. (2008). Al final de este periodo, los peces terminaron en estadios de regresión gonadal debido al estrés producido por la captura y el acondicionamiento al cautiverio; por lo que fueron mantenidos 30 días más para su recuperación gonadal con alimentación ad líbitum. Después de este periodo se realizó un muestreo invasivo para verificar histológicamente la maduración gonadal de los peces (hembras vitelogénicas y machos con espermatozoides).

Los peces maduros (longitud total promedio 15,3 ± 0,7 cm; n = 298) fueron anestesiados con MS222 (40 mg L-1 ) para registrar su peso corporal y calcular el volumen de hormona a inyectar a cada uno, de acuerdo a la dosis fijada. Se evaluó cuatro grupos experimentales: i) inyectados con 0,005 µg GnRHa g-1 pez (GnRHa), ii) inyectados con 0,005 µg GnRHa g-1 pez + 0,01 mg DOM g-1 pez (GnRHa+DOM), iii) inyectados con solución salina 0,9 % (SS) y iv) peces sin inyectar (SI); los cuales fueron colocados en tanques de 2 m de capacidad para evaluar su respuesta a 0, 12, 24 y 48 h post-inyección (p.i.). El muestreo a las 0 h fue realizado exactamente a los 15 minutos p.i. Se utilizó acetato de buserelina (Conceptal ®) como GnRHa y Netaf ® como DOM. Los peces fueron inyectados a las 18 h del día en grupos de 20 (seis por cada tratamiento) hasta completar al menos seis individuos por cada sexo, cada tiempo p.i. y cada tratamiento. Transcurrido el tiempo p.i, correspondiente, los peces fueron anestesiados para extraer muestras de sangre y luego sacrificados por decapitación para disectar sus gónadas y fijarlas en formaldehido para su procesamiento histológico.

Las muestras de sangre fueron obtenidas por punción caudal con una jeringa heparinizada calibre 26, luego centrifugadas en tubos de microcentrífuga a 614 g durante 10 min para separar el plasma y refrigerarlo hasta su análisis. Mediante radioinmunoanálisis (RÍA) se cuantificaron los niveles plasmáticos de 17B-estradiol (E2), testosterona (T) y 17a,20B-dihidroxi-4-pregnen-3-ona (17,20BP) en los laboratorios de la Universidad La República (Uruguay). De acuerdo a la metodología descrita por Barrios (2005), se realizó una doble extracción del esteroide de las muestras de plasma con acetato de etilo xiclohexano (1:1). Los extractos se evaporaron y se retomaron en buffer fosfato (50 mM; pH 7,4; NaCl 150 mM) con 0,1% gelatina. La incubación se realizó durante 20 h a 18°C con las siguientes diluciones finales de antisueros: anti-17,20BP 1/9000, anti-T 1/4800 y anti-E2 1/1800. La reacción fue detenida mediante el agregado de una suspensión carbón/dextrán a 0°C (500 mg de carbón y 50 mg de dextrán T70 en buffer fosfato), incubadas durante 15 min y finalmente centrifugadas a 3500 g durante 15 min a 2°C. Al sobrenadante se les agregó 4 mL de líquido de centelleo para la medición de su radioactividad. El límite de los ensayos fue determinado en 30 pg mL-1 .

De acuerdo a las características histológicas de las gónadas descritas por Hunter & Golberg (1980) en la anchoveta del norte E. mordax y en la aplicación de éstas a la anchoveta peruana por Buitrón et al. (1997), los peces fueron clasificados como evacuados y no evacuados. En el caso de las hembras, fueron consideradas desovadas o evacuadas, aquellas que presentaron ovocitos hidratados (OH) y/o folículos post-ovulatorios de 0 a 24 h (F0) y de 24 a 48 h (F1) (Hunter & Macewicz, 1983). Los porcentajes de desove y espermiación fueron determinados respecto al número de hembras o machos maduros tratados. Las comparaciones de las frecuencias de hembras desovadas y machos expulsantes entre tratamientos fueron hechas por medio de pruebas chi-cuadrado, mientras que de los niveles plasmáticos de hormonas esteroideas se realizó con las pruebas de Kruskall-Wallis y Wilcoxon-Mann-Whitney. Las diferencias fueron consideradas significativas cuando P < 0,05.

RESULTADOS

No hubo hembras desovantes en los grupos SS ni en SI, por lo que se consideró en adelante ambos tratamientos como un solo grupo control. Con el tratamiento GnRHa, a las 24 y 48 h post-inyección (p.i.) desovaron el 50% y 54,6% de las hembras respectivamente; mientras que con el tratamiento GnRHa+DOM, lo hicieron el 30,8% y 11,1% respectivamente (Fig. 1). Los porcentajes totales de hembras desovadas fueron 57,3% y 20,9% con GnRHa y GnRHa+DOM respectivamente, valores significativamente diferentes (P < 0,05).


Figura 1. Porcentaje de hembras desovantes y machos expulsantes de E. ringens en cautiverio, posterior a la inyección de GnRHa o GnRHa+DOM. Diferentes letras indican diferencias estadísticamente significativas entre tratamientos de la misma hora (P < 0,05). GnRHa: análogo de hormona liberadora de gonadotrofina (acetato de buserelina); DOM: domperidona.

Figure 1. Percentage of spawned females and evacuated males of E. ringens in captivity after GnRHa or GnRHa+DOM injection. Different letters indicate significant differences between treatments at the same time (P < 0.05). GnRHa: gonadotropin releasing hormone analogue (buserelin analogue); DOM: domperidone.

Mediante identificación histológica de OH, F0 y Fl, se observó que las hembras de los muéstreos de 24 h p.i. presentaron OH y/o F0; mientras que de las desovadas en el muestreo de 48 h p.i., el 83,3% del tratamiento con GnRHa presentó Fl (Fig. 2).


Figura 2. Porcentajes de hembras con ovocitos hidratados (OH) folículos post-ovulatorios de 0 a 24 h (F0), folículos post-ovulatorios de 24 a 48 h (F1) para la determinación de la hora de desove en pruebas de inducción en E. ringens en cautiverio.

Figure 2. Percentages of females with hydrated oocytes (OH), postovulatory follicles of 0 to 24 h (F0), postovulatory follicles of 24 to 48 h (F1) for determination of spawning time in induction test of E. ringens in captivity.

No se observó diferencias entre los niveles plasmáticos de esteroides gonadales en hembras (P > 0,05) encontrándose todos los valores de E2 y T por debajo de 4000 pg/mL y los de 17,20BP menores a 2000 pg/mL (Fig. 3).


Figura 3. Niveles plasmáticos de esteroides gonadales en E. ringens inducidos al desove en cautiverio. Diferentes letras indican grupos estadísticamente diferentes entre horas del mismo tratamiento. Valores muestran media ± error estándar.

Figure 3. Plasmatic levels of gonadal steroids in E. ringens induced to spawning in captivity. Different letters indicate statistically different groups between hours of the same treatment. Values represent mean ± standard error.

Los porcentajes de machos expulsantes en los grupos SS y SI fueron estadísticamente despreciables y no mostraron diferencias significativas entre ellos (P > 0,05), por lo que también se les consideró en adelante como un mismo grupo control. Hubo un efecto inmediato del tratamiento hormonal en los machos; observándose machos expulsantes desde las 0 h (44,4%) y con valores máximos a las 12 h p.i. (85,7%) en los tratados con GnRHa. Con GnRHa+DOM, el 20% de machos expulsó a las 0 h y los máximos valores se observaron también a las 12 h p.i. (75,0%) (Fig. 1). Los porcentajes totales de machos expulsantes fueron 73,3% y 53,3% con GnRHa y GnRHa+DOM, respectivamente, siendo los valores significativamente diferentes (P < 0,05).

En los machos, sólo los niveles plasmáticos de E2 del grupo control a las 0 h mostraron diferencias significativas (11938 pg/mL) respecto a los de 12, 24 y 48 p.i. (5267; 1886 y 2659 pg/mL respectivamente) (P < 0,05) (Fig. 3). Los niveles de T y 17,20BP no mostraron variación ni entre tratamientos ni en el tiempo (P > 0,05) (Fig. 3).

DISCUSIÓN

El acetato de buserelina, un análogo de GnRH utilizado en mamíferos, resultó ser un efectivo inductor del desove (24 h p.i.) y espermiación (12 h p.i.) en Engraulis ringens. Trabajos previos reportan también a este compuesto como un potente inductor del desove en truchas (Arabaci et al., 2004b) y carpas cuando es utilizado con algún antidopaminérgico (Sukumasavin & Leelapatra, 1993; Sukumasavin et al., 2000).

Aunque los porcentajes de hembras desovadas a 24 y 48 h p.i. fueron similares, los análisis histológicos mostraron OH y F0 en el primer grupo y Fl en el según grupo. Ello indica que casi la totalidad de desoves detectados en el muestreo de 48 h p.i. ocurrió a las 24 h p.i. En ese sentido, el periodo de latencia fue rápido comparado con el de otros peces marinos como Dicentrarchus labrax (Firat et al., 2005; Forniés et al., 2001) y E. mordax (Leong, 1971).

Los bajos niveles plasmáticos de E2 y T observados en hembras desde el inicio del experimento, confirman el final del proceso de vitelogénesis, indicando que el momento de la inducción del desove fue el adecuado. Estos niveles se mantuvieron así, tal como corresponde a los estadios de maduración final en peces (King et al., 1994). Además, en ningún momento del experimento se observó elevación de los niveles plasmáticos de 17,20ßP a pesar que el periodo entre muéstreos fue corto (12 h), ello podría indicar que este esteroide no sería el inductor de la maduración final (MIS) en esta especie. Al respecto, es conocido que el 17,20BP es el MIS principalmente en goldfish y salmónidos (Nagahama, 1997). Sin embargo, en algunas especies se reporta al 17a,20B,21-trihidroxi-4-pregnen-3-ona (17,20B,21P) como el responsable de esta función (Patino & Thomas, 1990; García et al., 2004; Alberro et al., 2008), lo cual podría estar sucediendo también en engráulidos. No debería descartarse tampoco la ocurrencia de acciones paracrinas o metabolizaciones de la 17,20BP a nivel ovárico, las cuales pudiesen haber enmascarado sus fluctuaciones plasmáticas, tal como se ha descrito en otras especies (Scott & Canario, 1987; Scott et al., 1998; Asturiano et al., 2002). En este sentido, son necesarios más estudios para identificar al MIS en esta especie y la función que cumpliría el 17,20BP para optimizar los desoves en cautiverio.

La presencia de machos expulsantes inmediatamente después de la inyección, lo cual no se observó en los grupos control, indicaría una rápida acción del GnRHa sobre la espermiación, tal como se ha reportado para la lubina Dicentrarchus labrax, donde el tratamiento incrementó considerablemente los niveles de LH en plasma y minutos después la espermiación (Mañanós et al., 2002). También algunos peces del control mostraron expulsión de espermatozoides. Como lo describen Pérez et al. (2000) en Anguilla anguilla, tal hecho ocurriría como respuesta a feromonas liberadas al agua por los peces tratados con GnRHa; ya que a pesar de encontrarse en diferentes tanques, todos los peces utilizaron el mismo sistema de recirculación de agua. Ello podría haber causado entonces la disminución de los niveles de E2 plasmático en el grupo control, en que los valores disminuyeron significativamente a partir de las 12 h p.i. Al igual que en las hembras, en los machos tratados con GnRHa, los niveles de E2, T y 17,20BP no mostraron diferencias significativas durante todo el experimento.

Los mayores porcentajes de desoves y espermiación de los peces tratados con GnRHa respecto a los tratados con GnRHa+DOM, indicarían que la anchoveta peruana no tendría un fuerte control dopaminérgico en su sistema gonadotrófico, como sí ocurre en Cirrhinis molitorella, Ctenopharyngodon idellus, Hypophalmichthys molitrix, Paramisgurnus dabryanus (Richard et al., 1988), Cyprinus carpió (Alok et al., 1997), Rutilus frisii kutum (Heyrati et al., 2007) y D. labrax (Firat et al., 2005). Por el contrario, se ha observado una significativa reducción de los porcentajes de desove y espermiación al inyectar DOM, tal como lo registrado por Prat et al. (2001) en D. labrax, quienes plantean un efecto negativo de algunos antidopaminérgicos en peces en los que la dopamina no es un inhibidor determinante de GnRHs.

AGRADECIMIENTOS

Este trabajo fue financiado por el Proyecto "Determinación experimental en ambientes controlados de los rangos de tolerancia de especies indicadoras a los cambios en las principales variables ambientales". Agradecemos al M.Sc. Víctor Yépez (IMARPE) por sus aportes y correcciones en la revisión de este artículo.

 

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Corresponding author: Carlos Espinoza (cespinoza@imarpe.gob.pe)

Received: 23 Jun 2009; Accepted: 11 May 2010